Клещевой Энцефали Ту Собак

Содержание

Приказ Минздрава РТ от 12.07.2020 N 429 «Об УСИЛЕНИИ МЕРОПРИЯТИЙ ПО ПРЕДУПРЕЖДЕНИЮ ЗАБОЛЕВАНИЯ КЛЕЩЕВЫМ ЭНЦЕФАЛИТОМ в ТАТАРСТАНЕ» (вместе с «ПАМЯТКОЙ ДЛЯ НАСЕЛЕНИЯ»)

Архив

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РЕСПУБЛИКИ ТАТАРСТАН

ПРИКАЗ

от 12 июля 2020 г. N 429

ОБ УСИЛЕНИИ МЕРОПРИЯТИЙ ПО ПРЕДУПРЕЖДЕНИЮ ЗАБОЛЕВАНИЯ

КЛЕЩЕВЫМ ЭНЦЕФАЛИТОМ в ТАТАРСТАНЕ

Эпидемиологическая обстановка по клещевому энцефалиту в Республике Татарстан, как и в Российской Федерации, остается напряженной. За последние 10 лет в республике зарегистрировано 220 случаев заболевания клещевым энцефалитом. За 2020 год и за 5 месяцев 2020 года случаи заболевания не регистрировались.

Эндемичными территориями по клещевому вирусному энцефалиту в Республике Татарстан являются Агрызский, Азнакаевский, Аксубаевский, Алексеевский, Альметьевский, Бавлинский, Бугульминский, Елабужский, Заинский, Лениногорский, Менделеевский, Муслюмовский, Нижнекамский, Новошешминский, Нурлатский, Сабинский, Черемшанский, Чистопольский и Ютазинский районы, г. Набережные Челны.

Учитывая большую миграцию населения, особенно в летний период, в том числе и в эндемичные территории, проблема клещевого энцефалита остается актуальной и требующей особого внимания.

В целях предупреждения заболевания клещевым вирусным энцефалитом и во исполнение санитарных правил СП 3.1.098-96 «Клещевой энцефалит», приказа МЗ СССР от 09.04.1990 N 141 «О дальнейшем совершенствовании мероприятий по профилактике клещевого энцефалита», постановления Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 22.12.2020 N 34 «Об усилении надзора за клещевым вирусным энцефалитом и мерах по его профилактике» приказываю:

1. Руководителям медицинских учреждений Республики Татарстан:

1.1.1. Оказание медицинской помощи больным клещевым вирусным энцефалитом в соответствии с приложением N 1 к настоящему приказу.

1.1.2. Контроль за наличием и своевременной закупкой вакцины и специфического иммуноглобулина против клещевого энцефалита, их транспортировку и хранение с соблюдением «холодовой цепи», правильность учета и расходования.

1.1.3. Повышение уровня знаний медицинских работников по клинике, диагностике и профилактике клещевого вирусного энцефалита.

1.1.4. Проведение иммунизации против клещевого вирусного энцефалита лиц, выезжающих в эндемичные территории, согласно утвержденным планам профилактических прививок.

1.1.5. Проведение экстренной профилактики клещевого вирусного энцефалита лицам, прибывшим из эндемичных районов и имевшим случаи присасывания клещей, путем введения специфического иммуноглобулина.

2. Генеральному директору ГУП «Таттехмедфарм» Н.И.Галиуллину обеспечить своевременную закупку вакцины и иммуноглобулина для профилактики клещевого вирусного энцефалита в соответствии с заявками медицинских учреждений Республики Татарстан.

3. Главному врачу Республиканского центра медицинской профилактики Р.В.Тазиеву обеспечить информирование населения Республики Татарстан по вопросам профилактики клещевого вирусного энцефалита, в том числе через средства массовой информации.

4. Контроль исполнения настоящего приказа возложить на заместителей министра здравоохранения Республики Татарстан Р.К.Голубеву, Ф.Ф.Яркаеву.

первый заменитель министра

ВЫЯВЛЕНИЕ, ДИАГНОСТИКА, ПРОФИЛАКТИКА

КЛЕЩЕВОГО ВИРУСНОГО ЭНЦЕФАЛИТА

Мероприятия по выявлению, диагностике и профилактике клещевых вирусных энцефалитов (далее — КВЭ) включают:

1. Выявление, регистрацию, учет и своевременную госпитализацию больных.

При постановке диагноза КВЭ, наряду с клиническими проявлениями заболевания, важное значение имеют данные эпидемиологического анамнеза — пребывание больного в эндемичной территории, указание на посещение леса, факт присасывания клеща, соответствие сезона и начала болезни, употребление сырого молока коз, овец, коров, буйволов.

Проводится дифференциальная диагностика в начальном периоде КВЭ с гриппом, лептоспирозом, геморрагической лихорадкой с почечным синдромом, серозными менингитами различной этиологии, североазиатским клещевым сыпным тифом, полиомиелитом, системным клещевым боррелиозом.

2. Подачу экстренного извещения на случаи заболевания КВЭ в ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Республике Татарстан».

3. Проведение амбулаторного долечивания, диспансерного наблюдения за переболевшим в течение 1 — 3 лет и более территориальными амбулаторно-поликлиническими медицинскими учреждениями.

Сроки наблюдения зависят от формы заболевания и остаточных явлений, поэтому наблюдение могут проводить врачи различных специальностей (инфекционист, кардиолог, ревматолог, офтальмолог и др.) в зависимости от ведущей симптоматики в острый период заболевания. Наблюдение осуществляется с периодичностью 1 раз в 3 — 6 месяцев или согласно клиническим показаниям. Наблюдение включает в себя опрос и осмотр пациента с проведением серологических исследований в случае необходимости. Основанием для снятия с диспансерного учета переболевшего КВЭ является полное восстановление работоспособности и удовлетворительное самочувствие (с учетом нормализации показателей лабораторно-инструментальных методов исследования).

4. Проведение специфической профилактики заболевания.

4.1. Планирование и проведение профилактических прививок против КВЭ лицам, выезжающим в неблагополучные по клещевому энцефалиту территории.

4.2. Профилактические прививки по эпидемическим показаниям против КВЭ проводят вакцинами, предназначенными для этой цели и разрешенными в установленном порядке для применения в Российской Федерации в соответствии с инструкциями по их применению:

Примечание: Инструкция по применению утверждена Главным государственным санитарным врачом РФ 22.08.2020 N 01-11/18-04.

При замене одного препарата на другой интервал между вакцинацией и ревакцинацией, а также между прививками при ревакцинации должен соответствовать сроку, указанному в инструкции препарата, которым проведена предыдущая прививка.

Максимальный возраст вакцинируемых не регламентирован, его определяют в каждом конкретном случае исходя из целесообразности вакцинации и состояния здоровья вакцинируемого.

При нарушении курса вакцинации (отсутствии документально подтвержденного полноценного курса) прививки проводятся по схеме первичной вакцинации.

4.3. Проведение серопрофилактики населению, обращающемуся за медицинской помощью по поводу присасывания клещей.

Для экстренной профилактики используют человеческий иммуноглобулин против клещевого энцефалита:

Примечание: инструкция по применению утверждена Главным государственным санитарным врачом РФ 08.09.2020.

Препарат вводят не привитым против КВЭ лицам, отметившим присасывание клещей в эндемичных районах.

Вакцинированным лицам препарат вводят только в случае множественного присасывания клещей. Введение иммуноглобулина эффективно в течение первых 72 часов после присасывания клещей.

В целях более рационального использования препарата необходимо проводить исследования снятых с пациентов клещей на наличие в них антигена вируса клещевого энцефалита методом иммуноферментного анализа (ИФА) в вирусологической лаборатории ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в РТ» по адресу: г. Казань, ул. М.Межлаука, д. 22, тел. 238-21-53.

Действия при присасывании (укусе) клеща проводить согласно приложению N 2 к настоящему приказу.

В случае необходимости проведения активной иммунизации живыми вакцинами против других инфекций (корь, туберкулез, эпидемический паротит и др.) она должна быть отложена на 3 месяца после последнего введения иммуноглобулина против КВЭ из-за снижения эффективности живой вакцины.

Интервал между введением иммуноглобулина и последующим введением вакцины против клещевого энцефалита должен быть не менее 4 нед.

Человеческий иммуноглобулин против КВЭ возможно применять перед вероятным контактом с вирусом клещевого энцефалита — укусом клеща в эндемичном районе (доэкспозиционная профилактика). Защитное действие препарата начинается через 24 — 48 часов и продолжается около 4 недель, после чего введение препарата повторяют в той же дозе.

5. Санитарно-просветительская работа среди населения (приложение N 3).

Эффективность профилактики КВЭ во многом зависит от осведомленности населения о проявлениях и последствиях заболевания, условиях заражения и индивидуальных мерах защиты. Разъяснение значения профилактических мероприятий от нападения и присасывания клеща как профилактических мероприятий от всего комплекса инфекций, которыми человек может заразиться от клеща, т.е. применения таких простых мер индивидуальной защиты, как использование аэрозольных препаратов, которые наносятся на одежду и убивают напавших клещей, вакцинации и ревакцинации, соблюдение сроков проведения прививок, информация о значении серопрофилактики, условиях ее эффективности помогает сформировать правильное отношение населения к этим профилактическим мероприятиям.

С этой целью медицинские учреждения должны использовать все доступные методы агитации.

ДЕЙСТВИЯ ПРИ УКУСЕ КЛЕЩА

Заражение человека клещевым вирусным энцефалитом происходит через укус инфицированного клеща. Основную массу возбудителей клещи передают в первые минуты укуса вместе с первой порцией обезболивающей слюны. Возможно заражение клещевым вирусным энцефалитом и при раздавливании клеща в процессе удаления его с животных или тела человека с последующим занесением вируса на слизистые оболочки глаз, носа и губ или на поврежденные участки кожи.

Если клещ присосался к коже человека, то снимать его следует особенно осторожно, чтобы не оборвать хоботок, который глубоко и сильно укрепляется на весь период присасывания.

При удалении клеща необходимо соблюдать следующие рекомендации:

— захватить клеща пинцетом или обернутыми чистой марлей пальцами как можно ближе к его ротовому аппарату и держа строго перпендикулярно поверхности укуса повернуть тело клеща вокруг оси, извлечь его из кожных покровов;

— место укуса продезинфицировать любым пригодным для этих целей средством (70% спирт, 5% йод, одеколон и т.д.);

— после извлечения клеща необходимо тщательно вымыть руки с мылом;

— снятого клеща следует сжечь или залить кипятком;

— в случае отрыва головки или хоботка клеща (случайно или во время его удаления) на коже остается черная точка, которую необходимо обработать 5% йодом и оставить до естественной элиминации.

Клещей, извлеченных из кожи, доставлять в вирусологическую лабораторию ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в РТ» по адресу: г. Казань, ул. М.Межлаука, д. 22, тел. 238-21-53. Исследования на зараженность клещей проводят с соблюдением следующих правил:

1. Для исследования пригодны только живые клещи.

2. Не следует смазывать клещей маслами, кремами и т.д.

3. Удаленного клеща следует поместить в чистую посуду (пробирка, пузырек, баночка и т.п.), в которую с целью создания повышенной влажности предварительно поместить чуть смоченную водой гигроскопичную бумагу (фильтровальная, бумажная салфетка и др.).

4. Хранение и доставка клещей с соблюдением вышеуказанных условий возможны только в течение 2 суток.

ПАМЯТКА ДЛЯ НАСЕЛЕНИЯ

Клещевой вирусный энцефалит (КВЭ) — острое инфекционное вирусное заболевание с преимущественным поражением центральной нервной системы. Заражение в эндемичных районах возможно с марта — апреля по сентябрь — октябрь, наиболее опасным временем являются май и июнь.

Возбудитель болезни передается человеку в первые минуты укуса зараженного вирусом клеща вместе с обезболивающей слюной. К заражению КВЭ восприимчивы все люди независимо от пола и возраста.

Заражение населения возможно:

— при посещении эндемичных по КВЭ территорий в лесах, лесопарках, на индивидуальных садово-огородных участках;

— при заносе клещей животными (собаками, кошками) или людьми — на одежде, с цветами, ветками и т.д. (заражение людей, не посещающих лес);

— при снятии, раздавливании клеща или расчесывании места укуса также может произойти заражение КВЭ в результате втирания в кожу со слюной или тканями клеща возбудителя инфекции;

— при употреблении в пищу сырого молока коз (чаще всего), коров и буйволов, у которых в период массового нападения клещей вирус может находиться в молоке. Поэтому в неблагополучных территориях по клещевому вирусному энцефалиту необходимо употреблять этот продукт только после кипячения.

Инкубационный (скрытый) период заболевания длится от 8 до 23 дней, иногда до 60 дней, чаще 10 — 14 дней.

Болезнь начинается остро и сопровождается ознобом, сильной головной болью, резким подъемом температуры до 38 — 39 град. С, тошнотой, рвотой.

Заболевание клещевым вирусным энцефалитом можно предупредить с помощью неспецифической и специфической профилактики. Основной задачей неспецифической профилактики является предотвращение укуса клеща.

Неспецифическая профилактика включает применение:

— специальных защитных костюмов. Костюм для защиты от гнуса и клещей, состоящий из «комплекта трикотажного защитного технического назначения» ТУ 17-РСФСР-53-10-435-82 (верхняя и нательная сетчатые рубашки и наголовная накидка) или «костюма мужского летнего для рабочих-лесозаготовителей, защитного от насекомых» ТУ 17-РСФСР-06-76-94-81 (брюки, куртка);

— приспособленной одежды. Указанная одежда не должна допускать заползания клещей через воротник и обшлага. Брюки должны быть заправлены в сапоги, гольфы, носки с плотной резинкой. Верхняя часть одежды (рубашка, куртка) должна быть заправлена в брюки, а манжеты рукавов — плотно прилегать к руке. Ворот рубашки и брюки не должны иметь застежки или иметь застежку типа «молния», под которую не может заползти клещ. На голове пред почтительнее иметь шлем-капюшон, плотно пришитый к рубашке, в крайнем случае, волосы должны быть заправлены под косынку. Одежда должна быть однотонной, так как на ней клещи более заметны;

— специальных химических препаратов, наносимых на одежду с целью защиты от нападения клещей и снижения риска заражения. Применяться должны только средства, зарегистрированные на территории Российской Федерации в установленном порядке. Эффективность и безопасность данных препаратов зависит от соблюдения рекомендаций по способам их применения, указанных на этикетке. При этом обязательным условием является соблюдение мер предосторожности, личной гигиены, а в случае отравления — первой помощи. Необходимо учитывать, что применение химических препаратов для индивидуальной защиты от клещей не должно отменять проведения специфической профилактики КВЭ для лиц, выезжающих в эндемичные по КВЭ территории с целью осуществления профессиональных работ или индивидуального отдыха; студентов, выезжающих на практику или в строительные отряды.

Препараты, содержащие инсектициды, наносятся только на одежду, применение их на кожные покровы запрещено!

4. Хранение и доставка клещей с соблюдением вышеуказанных условий возможны только в течение 2 суток.

Значение ЭНЦЕФАЛИТ КЛЕЩЕВОЙ ШОТЛАНДСКИЙ в Медицинских терминах

(син.: вертячка овец вирусная, энцефалит овец шотландский, энцефаломиелит овец шотландский) инфекционная болезнь из группы клещевых вирусных энцефалитов, вызываемая арбовирусом группы В; характеризуется у человека двухволновой лихорадкой с мозжечковым синдромом в первой фазе болезни и с проявлениями менингоэнцефалита во второй фазе; встречается гл. обр. в Великобритании.

(син.: вертячка овец вирусная, энцефалит овец шотландский, энцефаломиелит овец шотландский) инфекционная болезнь из группы клещевых вирусных энцефалитов, вызываемая арбовирусом группы В; характеризуется у человека двухволновой лихорадкой с мозжечковым синдромом в первой фазе болезни и с проявлениями менингоэнцефалита во второй фазе; встречается гл. обр. в Великобритании.

Центр развития ребёнка — детский сад «Улыбка»

Внимание клещевой вирусный энцефалит!

Анализ эпидемиологической обстановки в Ханты-Мансийском автономном округе – Югре по заболеваемости клещевыми инфекциями и эффективности проводимых профилактических мероприятий показывает, что несмотря на тенденцию снижения заболеваемости в многолетней динамике, ситуация продолжает оставаться напряженной.

В эпидсезон 2020 года в лечебно-профилактические учреждения автономного округа обратилось за помощью с присасыванием клеща 4297 человек, что в 1,3 раза больше, чем за аналогичный период 2020 года (3145 человек). Среди детей в возрасте до 14 лет пострадало от укусов 526 детей (в 2020 – 384 ребенка). Серопрофилактику получили 97% пострадавших от укусов клещей.

Показатель заболеваемости клещевым вирусным энцефалитом (КВЭ) в 2020 году составил 0,69 на 100 тысяч населения и увеличился относительно предыдущего года в 1,8 раза. Заболеваемость зафиксирована в Ханты-Мансийском районе, гг. Ханты-Мансийске, Урае, Мегионе, Сургуте, Нефтеюганске. В 2020 году зарегистрирован один летальный исход от КВЭ в г. Ханты-Мансийске у мужчины непривитого против данной инфекции и не получившего противоклещевой иммуноглобулин.

Заболеваемость иксодовым клещевым боррелиозом (ИКБ) составила 0,57 на 100 тысяч населения, что в 2,2 раза ниже уровня прошлого года и в 7 раз ниже среднефедерального показателя.

В 2020 году привито от клещевого энцефалита 112 531 житель округа, что составило 78,1% от плана. Наиболее низкие показатели выполнения плана отмечаются в Кондинском (52%), Белоярском (52,4%) районах, городах Урае (55%), Нягани (55%), Югорске (54,6%).

С 2020 года наблюдается негативная тенденция снижения объемов иммунизации против КВЭ, что приводит к уменьшению иммунной прослойки. В целом по округу она составила 13,8%, наиболее низкие показатели защищенности населения в городах Сургуте (5,7%), Урае (7,9%), Нижневартовске (4,3%), Покачах (6,0%). В особо неблагополучных территориях охват населения прививками против КВЭ также не достигает необходимых 95% (Нефтеюганский район – 57,4%, Ханты-Мансийский район – 37,5%, Ханты-Мансийск – 13,45%, Нефтеюганск – 36,7%, Кондинский район – 25,4%).

Благоприятные тенденции многолетней динамики заболеваемости КВЭ и ИКБ являются следствием увеличения объемов акарицидных и дератизационных обработок. В 2020 году противоклещевые обработки были проведены на площади 10437,38 га, дератизационные – 1937,8 га, что больше, чем в 2020 году соответственно в 4,8 и 13 раз.

В то же время недостаточно осуществляются дезинфекционные работы в садоводческих кооперативах, дачах, частном секторе в результате чего данные участки стали территориями риска по присасыванию клещей (30% от всех случаев нападения клещей в 2020году).

Учитывая переход эпидемического процесса клещевого энцефалита в положительную фазу цикла, увеличение численности рыжых полевок и полевых мышей, являющихся прокормителями иксодовых клещей, в сезон 2020 года прогнозируется осложнение эпидемиологической ситуации по клещевым инфекциям.

Клещевой вирусный энцефалит — острая природно-очаговая трансмиссивная вирусная инфекция с преимущественным поражением центральной нервной системы.

Резервуар и источник инфекции — большой круг теплокровных животных и птиц. Однако основным видом, поддерживающим существование вируса в природе, являются иксодовые клещи.

Для клещевого вирусного энцефалита характерна строгая весенне-летняя сезонность начала заболевания, связанная с сезонной активностью переносчиков. Пик высокой биологической активности клещей отмечается дважды за сезон: весной (май–июнь) и в конце лета (август–сентябрь).

Инфицирование человека вирусом клещевого энцефалита происходит во время кровососания заражённых клещей. Даже очень непродолжительное пребывание заражённого переносчика на теле после укуса может привести к инфицированию человека.

Известны случаи заражения людей вследствие проникновения вируса через повреждённую кожу и глаза при раздавливании инфицированного клеща. Возможно заражение через сырое молоко инфицированных коз, овец и коров. Козы способны несколько раз на протяжении жизни болеть клещевым энцефалитом, выделяя вирус с молоком, поэтому одно и то же животное может быть источником инфекции в разные эпидемические периоды.

К заражению клещевым энцефалитом восприимчиво всё население.

К профессиональным группам риска относятся лица, выполняющие работы, связанные с угрозой заражения КВЭ: сельскохозяйственные, по расчистке и благоустройству леса, заготовительные, промысловые, гидромелиоративные, строительные, по лесозаготовке, геологические, изыскательские, дератизационные, дезинсекционные и другие виды работ.

В последние годы клещевой энцефалит перестал быть профессиональным заболеванием. До 20% заболевших составляют дети до 14 лет. Увеличение числа заболеваний среди городских жителей, в том числе и среди детей школьного возраста, происходит главным образом за счёт населения крупных городов. Горожане заражаются в пригородных лесах, лесопарках, на индивидуальных садово-огородных участках. Клещи могут быть принесены домой вместе с животными, собранными растениями, грибами и т.д.

Инкубационный (скрытый) период длится от нескольких дней до 3 недель, в среднем составляет 2 недели. Заболевание начинается и развивается остро с повышением температуры тела до 39—40°С, ознобами, резкой общей слабостью, мучительными головными болями, болями в поясничной области и конечностях, в глазных яблоках, фотофобией. Возможны тошнота и повторная рвота. Характерен внешний вид больного — разлитая гиперемия захватывает кожу лица, шеи, груди. Уже в начальный период клещевого энцефалита на фоне выраженных общетоксических признаков развиваются характерные психоневрологические нарушения — заторможенность, сонливость, оглушённость при сохранённом сознании, дрожание языка.

Последствия заболевания разнообразны — от полного выздоровления до нарушений здоровья, приводящих к инвалидности и смерти. Переболевшие находятся под диспансерным наблюдением врача-невропатолога от 1 до 3 лет.

Профилактические мероприятия

Основными средствами специфической профилактики КВЭ служат вакцинация или экстренная профилактика человеческим иммуноглобулином против КВЭ.

К средствам неспецифической профилактики относится проведение расчистки и благоустройства территорий, акарицидных и дератизационных обработок лесопарковых зон, кладбищ, зон массового отдыха, оздоровительных учреждений, индивидуальная защита людей от нападения клещей (специальная одежда, периодические само- и взаимоосмотры, применение специальных противоклещевых средств для индивидуальной защиты).

Вакцинопрофилактика клещевого вирусного энцефалита

Самой надежной защитой против клещевого энцефалита является вакцинация.

Профилактические прививки против КВЭ населению проводятся государственными и частными организациями здравоохранения, имеющими лицензию на медицинские виды деятельности. Для вакцинопрофилактики КВЭ используют медицинские иммунобиологические препараты, разрешенные к применению в Российской Федерации.

Вакцинопрофилактику против КВЭ проводят круглогодично в соответствии с медицинскими показаниями и противопоказаниями и в соответствии с Национальным календарем профилактических прививок и прививок по эпидемическим показаниям.

Если прививка сделана в период активности клещей, то в течение 2 недель после неё надо воздержаться от посещения мест, где возможна встреча с клещом.

Все противоклещевые вакцины взаимозаменяемы, при смене одного препарата на другой интервал между вакцинацией и ревакцинацией, а также между прививками при ревакцинации должен соответствовать сроку, указанному в инструкции препарата, которым проведена последняя прививка.

Минимальный возраст вакцинируемых регламентирован инструкцией по применению препарата. Привитым против КВЭ считается лицо, получившее законченный курс вакцинации и 1 (или более) ревакцинацию. Вакцинация способна реально защитить около 95% привитых. Все люди, выезжающие на работу или отдых в неблагополучные по КВЭ территории, должны быть обязательно привиты.

Экстренная профилактика клещевого вирусного энцефалита

Для экстренной профилактики используют человеческий иммуноглобулин против КВЭ. Препарат вводят лицам:

— непривитым против КВЭ;

— получившим неполный курс прививок;

— имеющим дефекты в вакцинальном курсе;

— не имеющим документального подтверждения о профилактических прививках.

Введение человеческого иммуноглобулина против КВЭ рекомендуется не позднее 4 дня после присасывания клеща. Иммуноглобулинопрофилактика проводится в лечебно– профилактических организациях.

Для решения вопроса о необходимости назначения экстренной профилактики требуется проведение исследований снятых с людей клещей на наличие в них антигена вируса клещевого энцефалита.

Неспецифическая профилактика КВЭ

Неспецифическая профилактика КВЭ направлена на предотвращение присасывания клещей-переносчиков к людям.

Мероприятиями по неспецифической профилактике КВЭ являются:

— индивидуальная (личная) защита людей;

— уничтожение клещей (противоклещевые мероприятия) в природных биотопах с помощью акарицидных средств;

— экологически безопасное преобразование окружающей среды.

— истребление мышевидных грызунов (дератизационные мероприятия).

Отправляясь в лесопарк или лес следует надеть головной убор, одежду, закрывающую все тело, обрызгать одежду репеллентом. Для обнаружения клещей необходимо периодически (каждые 10 – 15 минут) осматривать свою одежду и тело самостоятельно или при помощи других людей, обращая особое внимание на следующие части тела: шея, подмышки, паховая область, ушные раковины — в этих местах кожа особенно нежная и тонкая, и клещ чаще всего присасывается именно там.

При обнаружении клеща нельзя его раздавливать, так как через микротрещины на руках можно заразиться клещевым энцефалитом или другими клещевыми инфекциями (иксодовый клещевой боррелиоз, моноцитарный эрлихиоз человека, гранулоцитарный анаплазмоз человека).

Средства защиты от клещей

Все продающиеся химические средства защиты от клещей в зависимости от действующего вещества делятся на 3 группы :
Репеллентные – отпугивают клещей.
Акарицидные – убивают!
Инсектицидно-репеллентные – препараты комбинированного действия, то есть убивающие и отпугивающие клещей.

Лабораторными испытаниями доказано, что при правильном (!) применении репеллентных препаратов отпугивается до 95 % прицепившихся клещей. Так как большая часть клещей прицепляется к брюкам, их необходимо обрабатывать более тщательно. Особенно внимательно нужно обрабатывать одежду вокруг щиколоток, коленей, бедер, талии, а также манжеты рукавов и воротник.

Применять средства защиты от клещей необходимо в соответствии с прилагаемой инструкцией.

Что делать, если укусил клещ

Следует помнить, что вероятность заболевания клещевым вирусным энцефалитом и другими инфекциями, передающимися клещами, зависит от количества возбудителя, проникающего при «укусе» (то есть времени, в течение которого клещ находился в присосавшемся состоянии) – чем раньше вы удалите впившегося клеща, тем лучше.

Клеща, снятого с человека, помещают в герметично закрывающуюся пробирку с небольшим кусочком чуть влажной ваты и направляют в лабораторию с соблюдением «холодовой цепи». Клеща следует доставить в лабораторию живым в течение 48 часов.

Как удалить клеща самостоятельно

Если у вас нет возможности обратиться за помощью в медицинское учреждение, то клеща придётся удалять самостоятельно.
Клещей удобно удалять изогнутым пинцетом или хирургическим зажимом, подойдет и любой другой пинцет. При этом клеща нужно захватить как можно ближе к хоботку, затем его аккуратно подтягивают, вращая вокруг своей оси в удобную сторону. Обычно через 1-3 оборота клещ извлекается целиком вместе с хоботком. Если же клеща попытаться выдернуть, то велика вероятность его разрыва.
Если под рукой нет ни пинцета, ни специальных приспособлений для удаления клещей, то клеща можно удалить при помощи нитки. Прочную нитку завязывают в узел, как можно ближе к хоботку клеща, затем клеща извлекают, подтягивая его вверх. Резкие движения недопустимы.
Удаление клеща необходимо производить с осторожностью, не сдавливая его тело, поскольку при этом возможно выдавливание содержимого клеща вместе с возбудителями болезней в ранку. Важно не разорвать клеща при удалении — оставшаяся в коже часть может вызвать воспаление и нагноение. При этом стоит учесть, что при отрыве головки клеща процесс инфицирования может продолжаться, так как в слюнных железах и протоках присутствует значительная концентрация вируса клещевого энцефалита.

После удаления клеща кожу в месте его присасывания обрабатывают настойкой йода или спиртом и тщательно моют руки с мылом.

Если при извлечении клеща оторвалась его головка, которая имеет вид черной точки, место присасывания протирают ватой или бинтом, смоченными спиртом, а затем удаляют головку стерильной иглой.

При невозможности исследования клеща (утерян, разрушен) осуществляется забор сыворотки крови и доставка её в лабораторию

Основными средствами специфической профилактики КВЭ служат вакцинация или экстренная профилактика человеческим иммуноглобулином против КВЭ.

Памятка о клещевом вирусном энцефалите

Клещевой вирусный энцефалит – острое инфекционное вирусное заболевание, с преимущественным поражением центральной нервной системы. Последствия заболевания: от полного выздоровления до нарушений здоровья, приводящих к инвалидности и смерти.

Как можно заразиться?

Возбудитель болезни (арбовирус) передается человеку в первые минуты присасывания зараженного вирусом клеща вместе с обезболивающей слюной

— при посещении эндемичных по КВЭ территорий в лесах, лесопарках, на индивидуальных садово-огородных участках,

— при заносе клещей животными (собаками, кошками) или людьми – на одежде, с цветами, ветками и т. д. (заражение людей, не посещающих лес),

а также, при употреблении в пищу сырого молока коз (чаще всего), овец, коров, буйволов, у которых в период массового нападения клещей вирус может находиться в молоке. Поэтому в неблагополучных территориях по клещевому энцефалиту необходимо употреблять этот продукт только после кипячения. Следует подчеркнуть, что заразным является не только сырое молоко, но и продукты, приготовленные из него: творог, сметана и т.д.,

при втирании в кожу вируса при раздавливании клеща или расчесывании места укуса.

В настоящее время заболевание клещевым энцефалитом регистрируется на многих территориях России, где имеются основные его переносчики – клещи. Наиболее неблагополучными регионами по заболеваемости являются Северо-Западный, Уральский, Сибирский и Дальне-Восточный регионы.

В Псковской области все районы и города Псков и Великие Луки являются неблагополучными по КВЭ.

Какие основные признаки болезни?

Для заболевания характерна весенне-осенняя сезонность, связанная с периодом наибольшей активности клещей. Инкубационный (скрытый) период длится чаще 10-14 дней, с колебаниями от 1 до 60 дней.

Болезнь начинается остро, сопровождается ознобом, сильной головной болью, резким подъемом температуры до 38-39 градусов, тошнотой, рвотой. Беспокоят мышечные боли, которые наиболее часто локализуются в области шеи и плеч, грудного и поясничного отдела спины, конечностей. Внешний вид больного характерен – лицо гиперемировано, гиперемия нередко распространяется на туловище.

Кто подвержен заражению?

К заражению клещевым энцефалитом восприимчивы все люди, независимо от возраста и пола.

Наибольшему риску подвержены лица, деятельность которых связана с пребыванием в лесу – работники леспромхозов, геологоразведочных партий, строители автомобильных и железных дорог, нефте- и газопроводов, линий электропередач, топографы, охотники, туристы. Горожане заражаются в пригородных лесах, лесопарках, на садово-огородных участках.

Как можно защититься от клещевого вирусного энцефалита?

Заболевание клещевым энцефалитом можно предупредить с помощью неспецифической и специфической профилактики.

Неспецифическая профилактика включает применение специальных защитных костюмов (для организованных контингентов) или приспособленной одежды, которая не должна допускать заползания клещей через воротник и обшлага. Рубашка должна иметь длинные рукава, которые у запястий укрепляют резинкой. Заправляют рубашку в брюки, концы брюк — в носки и сапоги. Голову и шею закрывают косынкой.

Для защиты от клещей используют отпугивающие средства – репелленты, которыми обрабатывают открытые участки тела и одежду.

Перед использованием препаратов следует ознакомиться с инструкцией.

Каждый человек, находясь в природном очаге клещевого энцефалита в сезон активности насекомых, должен периодически осматривать свою одежду и тело самостоятельно или при помощи других людей, а выявленных клещей снимать.

Меры специфической профилактики клещевого вирусного энцефалита включают:

— профилактические прививки против клещевого энцефалита проводятся лицам отдельных профессий, работающим в эндемичных очагах или выезжающих в них (командированные, студенты строительных отрядов, туристы, лица, выезжающие на отдых, на садово-огородные участки);

— серопрофилактику (непривитым лицам, обратившимся в связи с присасыванием клеща на эндемичной по клещевому вирусному энцефалиту территории, проводится только в ЛПО).

Все люди, выезжающие на работу или отдых в неблагополучные территории, должны быть обязательно привиты.

Где и как можно сделать прививку от клещевого вирусного энцефалита?

В Российской Федерации зарегистрированы несколько вакцин против клещевого вирусного энцефалита. Прививку от клещевого энцефалита можно сделать в прививочных пунктах на базах поликлиник, медсанчастей, здравпунктов учебных заведений после консультации врача.

Следует запомнить, что завершить весь прививочный курс против клещевого энцефалита необходимо за 2 недели до выезда в неблагополучную территорию.

Что делать и куда обращаться, если Вы не привиты и находились на опасной неблагополучной по клещевому энцефалиту территории и произошло присасывание клеща?

Не привитым лицам проводится серопрофилактика – введение человеческого иммуноглобулина против клещевого энцефалита в течение 96 часов после присасывания клещей, если он содержит вирус КВЭ,и обращения в медицинские организации по показаниям.

Как снять клеща?

Лучше это сделать в медицинском учреждении по месту жительства.

Снимать его следует очень осторожно, чтобы не оборвать хоботок, который глубоко и сильно укрепляется на весь период присасывания.

При удалении клеща необходимо соблюдать следующие рекомендации:

— место укуса продезинфицировать любым пригодным для этих целей средством (70% спирт, 5% йод, одеколон),

— после извлечения клеща необходимо тщательно вымыть руки с мылом,

— если осталась черная точка (отрыв головки или хоботка) обработать 5% йодом и оставить до естественной элиминации.

В Российской Федерации зарегистрированы несколько вакцин против клещевого вирусного энцефалита. Прививку от клещевого энцефалита можно сделать в прививочных пунктах на базах поликлиник, медсанчастей, здравпунктов учебных заведений после консультации врача.

Клещевой Энцефали Ту Собак

004662928 На правах рукописи

МОЛОТОВА Надежда Владимировна

КЛЕЩЕВОЙ БОРРЕЛИОЗ СОБАК В УСЛОВИЯХ ВОЛОГОДСКОЙ ОБЛАСТИ

диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Работа выполнена на кафедре эпизоотологии и микробиологии ФГОУ ВПО «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия имени Н. В. Верещагина».

Научный руководитель — доктор ветеринарных наук, профессор

Новикова Татьяна Валентиновна

Официальные оппоненты: доктор биологических наук

Ромашов Борис Витальевич

кандидат ветеринарных наук Гаврилова Надежда Алексеевна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО Московский государственный

университет прикладной биотехнологии (МГУПБ)

Защита диссертации состоится 27 мая 2020 в 13 часов на заседании диссертационного совета Д 220.059.03 при ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины» по адресу: 196084, Санкт-Петербург, ул. Черниговская, д. 5, тел/факс (812) 388 36 31

С диссертацией можно ознакомится в библиотеке ФГОУ ВПО ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины»

Автореферат разослан и размещен на сайте академии (http://spbgavm.ru’) 26 апреля 2020 г.

Ученый секретарь диссертационного совета Л- М. Белова

Общая характеристика работы

Иксодовый клещевой боррелиоз (ИКБ, болезнь Лайма) — болезнь общая для человека и животного. Занимает по уровню заболеваемости, тяжести и продолжительности клинического течения, затруднений в диагностике, а также широкого распространения одно из ведущих мест среди природно-очаговых инфекций в России и за рубежом (Коренберг Э. И., 1990, 1996). Возбудители его — комплекс Borrelia burdorferi sensu lato — передаются иксодовыми клещами.

По данным управления Роспотребнадзора в Вологодской области ИКБ в структуре природно-очаговых инфекций составляет 61,2-83,8%. Показатель заболеваемости населения Вологодской области иксодовым клещевым боррелиозом превышает в пять раз средний показатель по России. В тоже время при анализе отчетов департамента ветеринарии в области по формам 1-вет и 4-вет информация о данном заболевании отсутствует. Необходимо отметить, что требуют уточнения и данные по краевой эпизоотологии — видовой состав, экология и биология иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях.

В настоящее время в связи с выявлением очагов ИКБ и зараженных клещей в непосредственной близости от жилищ человека особую актуальность приобретает вопрос об участии в циркуляции спирохет домашних животных, в особенности собак, Burgess Е.С., 1986; Appel M.J. et al, 1993; Ожерелков C.B. и соав., 2020) крупного рогатого скота (Burgess Е. С. 1988, 1989; Bushmich S.L. et al., 1989) и заболеваемости их ИКБ. Воспримчи-вость к спирохетам у собак очень высока. Зараженная собака не только весь период до окончательного выздоровления служит резервуаром инфекции, но и может передавать возбудителя потомству трансплацентарно и даже с молоком (Burgess Е.С., 1986; Appel M.J. et al, 1993; Bauerfeind R. et al, 1993; Васильева И.С. и соав., 2020).

ИКБ собак интенсивно изучается в США, все большее внимание уделяется этой проблеме в странах Европы, Канаде, в Японии (Magnarelli L.A., et al., 1997, Straubinger R.K., 2020). В России имеются все условия для циркуляции возбудителя ИКБ у собак, но заниматься этой проблемой стали лишь недавно, а диагностика и профилактика боррелиоза животных не узаконена и не принята ветеринарной практикой (Васильева И.С. и соав., 2020).

изучение проблемы ИКБ у собак в России крайне важно не только с позиций ветеринарии, но и для успешной профилактики ЛБ человека.

Диагностика ИКБ у собак по клиническим признакам крайне затруднительна т.к. имеет несколько форм. В настоящее время в России отсутствуют отечественные тест-системы для иммунологической диагностики ИКБ у собак, поэтому практикующие ветеринарные врачи при подозрении на данное заболевание испытывают затруднения в своевременной и правильной диагностике, проведении лечения и контроля за ним.

Все вышесказанное предопределило цель и задачи исследований.

Цель и задачи исследования. Целью проводимых исследований явилось изучение экологии и биологии иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области, проведение серологических исследований животных на зараженность клещевыми инфекциями и усовершенствование методов диагностики клещевого бор-релиоза у собак.

Для достижения цели поставлены следующие задачи:

— установить наличие АТ к боррелиям передающимися иксодовыми клещами у собак и крупного рогатого скота;

— изучить особенности клинического проявления ИКБ у собак;

— изучить изменения гематологических и биохимических показателей крови у собак, спонтанно инфицированных возбудителями боррелиозов;

— выяснить видовой состав иксодовых клещей, степень их сезонной активности и спонтанной инфицированности боррелиями в условиях Вологодской области;

— изучить влияние основных климатических факторов на распространение, активность и зараженность клещей на урбанизированных территориях;

— изучить эпидемиологическую ситуацию по ИКБ на территории Вологодской области;

— совершенствовать методы диагностики ИКБ у собак.

Научная новизна. Впервые в Вологодской области изучена эпизоотическая ситуация и степень распространения иксодовых клещевых боррелиозов у собак. Изучены клинико-гематологические показатели при ИКБ собак. Установлены маркеры данного заболевания. Впервые разработана математическая модель управления «двойным» маркером.

Впервые в России получено серологическое подтверждение инфицированности крупного рогатого скота возбудителями ИКБ. Определена роль домашних животных в распространении боррелиоза.

В условиях Вологодской области проведены исследования по определению видового состава иксодоидных клещей, с учетом численности их и сезонной активности. Определена спонтанная инфицированность иксодовых клещей возбудителями ИКБ. Определен видовой состав боррелий.

Впервые разработана тест-система для диагностики ИКБ у собак методом ИФА.

Теоритическая и практическая значимость. Материалы диссертации вносят существенный вклад в решение актуальной проблемы борьбы с природно-очаговыми заболеваниями, а в особенности с болезнями общими для человека и животных.

Материалы диссертации использованы при подготовке:

1. Методических рекомендации «Иксодовый клещевой боррелиоз (экология, эпидемиология, клиника, диагностика, лечение, профилактика)». Утв. метод, комиссией фак. вет. мед. ВГМХА им. Н. В. Верещагина от 10.10.03.

2. Методических рекомендации «Клещевой боррелиоз Лайма у собак». Утв. научным координационным советом по животноводству и ветеринарии Северо-Западного научного центра Россельхозакадемии, от 10 апреля 2020 г.

В результате исследований разработана иммуноферментная тест-система для выявления суммарных антител к возбудителям иксодовых клещевых боррелиозов у собак.

Результаты работы включены отделом ветеринарии Департамента сельского хозяйства области в программу лекционного курса повышения квалификации врачей-эпизоотологов районных станций по борьбе с болезнями животных, Вологодским институтом переподготовки и повышения квалификации кадров агропромышленного комплекса (ФГОУ ВИППКК АПК) в план лекционного курса повышения квалификации ветеринарных врачей по программе «Технология сельскохозяйственного производства (ветеринария)», а также результаты исследований используются при проведении практических занятий и чтения лекций для студентов ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины» и ФГОУ ВПО «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия имени Н.В. Верещагина».

Основные положения, выносимые на защиту.

— Инфицированность возбудителями клещевых иксодовых боррелиозов собак и крупного рогатого скота на территории Вологодской области.

— Особенности клинического течения ИКБ у собак.

— Видовой состав иксодовые клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области.

— Численность и активность иксодовых клещей.

— Спонтанная инфицированность иксодовых клещей и видовой состав спирохет р. Borrelia.

— Совершенствование методов диагностики при посредстве разработки иммуноферментной тест-системы для выявления суммарных антител к возбудителям иксодовых клещевых боррелиозов у собак.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы доложены на научно-практических конференциях:

— научной международной конференции «Современные проблемы -общей, медицинской и ветеринарной паразитологии», Витебск, 2020;

— международном Московском конгрессе по болезням мелких домашних животных, Москва, 2020, 2020;

— научной международной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ, ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», Санкт-Петербург, 2020, 2020;

— в ежегодном смотре-сессии по отраслям науки на лучшую научную работу среди аспирантов и молодых ученых ВГМХА им. Н.В. Верещагина, ФГОУ ВПО «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н. В. Верещагина» 2020;

Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, одна из которых опубликована в журнале, рекомендованном ВАК Ми-нобрнауки РФ для публикации материалов докторских и кандидатских диссертаций (Ж. «Ветеринария» № 11, 2020).

Структура и объем диссертации. Диссертация включает в себя введение, обзор литературы, материалы и методы собственных исследований, заключение, выводы, практические предложения, список использованной литературы, включающий в себя 224 источника, из них 155 иностранных, приложения. Работа изложена на 150 страницах компьютерного текста и иллюстрирована 16 таблицами и 24 рисунками.

Благодарности. Автор выражает сердечную благодарность своему научному руководителю доктору ветеринарных наук Т. В. Новиковой за неоценимую помощь и постоянное внимание к работе. Мы искренне благодарны зам. генерального директора ООО «Омникс», Козаренко Александру Алексеевичу за предоставление лабораторного оборудования и всестороннюю помощь в разработке тест-системы. Отдельная благодарность специалистам Управления Роспотребнадзора по Вологодской области и ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Вологодской области» за сотрудничество и консультации в освоении методик работы.

Выражаем благодарность коллективу ветеринарной клиники «Центр» г. Москва, а также специалистам ветеринарных клиник гг. Вологды и Череповца, сотрудникам приюта для животных г. Мурманск за помощь в сборе клинического материала и апробации результатов исследований.

Материалы и методы. Диссертационная работа выполнена в период с 2020 по 2020 годы на кафедре эпизоотологии и микробиологии Вологод-

ской государственной молочнохозяйственной академии Н.В. Верещагина (ВГМХА).

На базе Территориального отдела Управления Роспотребнадзора по Вологодской области в городе Череповце и микробиологической лаборатории ЦГСЭН Вологодской области изучали эпизоотологию иксодовых клещей. На базе ООО «Омникс» (г. Санкт-Петербург) и ветеринарной клиники ООО «Центр» (г. Москва) проводили разработку и апробацию тест-системы.

Для изучения эпизоотической ситуации всего выпонено 3909 различных исследований проб, в том числе определение спонтанной инфициро-ванносТи у 1127 клещей (168 клещей снятых с животных и 959 из биотопов), 144 собак, 144 голов крупного рогатого скота на зараженность возбудителями ИКБ. У собак дополнительно проводили биохимическое исследование крови, клинический анализ крови, исследование мазков крови с целью исключения кровепаразитов.

Также проводили изучение видового состава иксодовых клещей, их численности и сезонной активности. Сбор клещей с целью изучения их видового состава, распространения в природных или хозяйственных биотопах, сезонной динамики и численности, а также их спонтанной инфицированное™. Учёты численности активных имаго и нимф клещей за сезон, активности на растительности проводили стандартизированным методом -флага с вычислением суммы ежедекадных учетов на флаго-километр (3.1.1027-01. МУ., М., 2020). С целью учета клещей на хозяине подвергались обследованию домашние животные. Клещей снимали с кожи животных, используя специальные приспособления для удаления клещей, такие как «Ручка-Лассо», «Тиктвистер». Определение видовой принадлежности собранного материала проводили по Померанцеву Б. И., 1950, Сердюковой Г.В., 1956, Филипповой Н. А, 1977. Исследовали собранных клещей с целью иключения возбудителей боррелиозов методами ТПР (темнопольная реакция), ПЦР, РНИФ и ИФА по утвержденным МЗ РФ методикам. При исследовании на клещевой боррелиоз методом темнопольной реакции, клещ должен быть обязательно живой (в работу берётся содержимое кишечника). Для обнаружения боррелий в клещах использовали темнополь-ную микроскопию по методике Ю.В.Ковалевского и соавт. (1988).

Кровь для серологического исследования у обследуемых животных забирали натощак из вены по общепринятым правилам. Определение антител к возбудителям иксодового клещевого боррелиоза у собак и крупного рогатого скота проводили при помощи корпускулярного боррелиозного диагностикума. Диагностику ИКБ осуществляли реакцией непрямой им-мунофлюоресценции. Для постановки РНИФ применяется корпускулярный боррелиозный антиген (КБА) производства ГУ НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи РАМН.

Диагностику кровепаразитов у собак после присасывания иксодовых

клещей осуществляли методом окраски мазков периферической крови по Паппенгейму.

Биохимические исследования сывороток проводили на биохимических анализаторах «Clima МС-15» и «Stat Fax 1904» в течение 2 часов с момента взятия крови. Общий клинический анализ крови проводили на автоматическом гематологическом анализаторе «Sysmex КХ-21».

Статистическую обработку полученных результатов проводили в соответствии с правилами биологической статистики — стандартных методов и при помощи компьютерной программы Statistica 6.0.

Экология и биология иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области.

Вологодская область входит в состав Федерального Северо-Западного округа. Череповецкий регион является юго-западной частью Вологодской области. Территория Череповецкого региона, где проводились исследования, характеризуется наличием большого числа озер и болот. Общее представление о климате г. Череповца — город расположен в зоне достаточного увлажнения. В течение года осадки распределяются неравномерно — 69% годового количества осадков приходится на теплый период времени и 31% — на холодный. Относительная влажность воздуха — 80%; Продолжительность теплого периода — 208 дней; На территории Вологодской области находятся зоны с резко различающимися техногенными загрязнениями. Наибольшее количество выбросов загрязняющих веществ в атмосферный воздух принадлежит городу Череповцу (72% в 2020 г.). Известно, что ик-содовые клещи способны накапливать в наружном скелете тяжелые металлы, что приводит к изменениями хитинового экоскелета Последнее влияет на векторную способность зараженности. Двигательная активность аномальных зараженных особей и, следовательно, их агрессивность, вероятность нападения на человека и животных выше; причем, чем интенсивнее заражены такие клещи, тем они более активны и более опасны.

Таким образом, климатические факторы, такие как благоприятная температура воздуха, отимальная относительная влажность, а также ланд-шафтно-географические, техногенные загрязнения создают благоприятные условия для жизнедеятельности иксодовых клещей на изучаемой территории. Расширению ареала и росту популяции клещей также способствует и увеличение посещений людьми и животными мест природного обитания и распространения клещей. Остатки продуктов после посещения леса отдыхающими, наличие сухостоя и валежника, создают благоприятные условия для жизни диких млекопитающих — прокормителей иксодовых клещей.

Для наблюдения за видовым составом, активностью и спонтанной ин-фицированностью иксодовых клещей был взят контрольный участок «Зеленая Роща» в лесопарковой зоне г. Череповца.

По результатам исследований в нашем регионе из иксодовых клещей встречаются следующие виды:

-1. persulcatus (таежный клещ) — он имеет первостепенное эпидемиологическое и эпизоотологическое значение, активен с апреля по август;

-1. ricinus (европейский лесной клещ) — активен с апреля по сентябрь;

— /. apronophorus — вид клеща нападающий на грызунов, но преимущественно на водяную полевку;

— Dermacenter pictus -активен в мае и осенью, эпизоотологического значения по иксодовому клещевому боррелиозу и клещевому энцефалиту не имеет. Он является переносчиком бабезиоза.

Численность и активность клещей на контрольном маршруте за 2020 — 2020 гг. варьирует в разные годы от 113 до 307 штук. Иксодовые клещи проявляют наибольшую активность в мае — июне (рис.1). В остальном, сезонный ход активности клещей имел типичное течение: вслед за высокой численностью клещей в июне происходило медленное снижение их активности до первой декады сентября.

Рис. 1. Динамика численности иксодовых клещей на стационаре «Зеленая роща»

С целью выявления основных факторов, определяющих численность активных клещей в природе, мы проследили за влиянием климатических условий на протяжении всего периода исследований. В результате кросс-табуляционного анализа получили статистически значимую зависимость

ш?/-* ЧГ /А л г л * норма ч

коллективный (парный) маркер (табл. 3). Взависимости от полученных данных, при подозрении на ИКБ, мы можем рекомендовать дальнейшее исследование на ИКБ методом ИФА, либо нет.

Мочевина Креа тинин Значения правой части уравнения Маркер

30 300 0,42945000 >0 справа от сепаратрисы сработал

11 350 -0,09051330 диссертации, кандидата ветеринарных наук, Молотова, Надежда Владимировна

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Видовой состав, морфология и физиология возбудителей иксодового клещевого боррелиоза.

1.2. Экология и эпизоотология иксодового клещевого боррелиоза.

1.2.1. Переносчики и резервуарные хозяева.

1.2.2. Пути и механизмы передачи возбудителей ИКБ.

1.2.3. Эколого-географическое распространение и зараженность основных переносчиков.

1.3. Эпидемиология ИКБ.

1.4. Течение и клинические проявления ИКБ у собак.

1.4.1. Клиническая классификация иксодовых клещевых боррелиозов у собак.

1.4.2. Клинические проявления иксодовых клещевых боррелиозов у других домашних животных.

1.5. Другие инфекции передаваемые иксодовыми клещами, клинические проявления и их диагностика.

1.6. Клинико-диагностические характеристики крови при иксодовом клещевом боррелиозе у собак.

1.7. Лабораторная диагностика ИКБ.

1.7.1. Прямые методы диагностики.

1.7.2 Непрямые методы диагностики.

1.8. Дифференциальная диагностика иксодового клещевого боррелиоза у собак.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Материалы и методы.

2.1.1. Классические методы сбора и видового определения иксодовых клещей.

2.1.2. Классические методы выделение боррелий из клещей.

2.1.3. Диагностика других кровепаразитов, передаваемых посредством иксодовых клещей.

2.1.4. Биохимические и клинические исследования крови.

2.2. Экология и биология иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области.

2.2.1. Краткая характеристика эколого-географических и климатических условий в Вологодской области.

2.2.2 Видовой состав иксодовых клещей на исследуемой территории .71 2.2.3. Численность и активность иксодовых клещей.

2.2.3.1. Численность и активность иксодовых клещей на стационаре «Зеленая роща».

2.2.3.2. Численность и активность иксодовых клещей в рекогносцировочные учеты.

2.2.3.3. Численность и активность иксодовых клещей на животных.

2.3. Иксодовый клещевой боррелиоз: эпизоотолого — эпидемиологическая проекция.

2.3.1. Спонтанная инфицированность иксодовых клещей спирохетами р. Borrelia.

2.3.1.1. Спонтанная инфицированность иксодовых клещей спирохетами p. Borrelia на исследуемой территории.

2.3.1.2. Спонтанная инфицированность иксодовых клещей спирохетами p. Borrelia снятых с животных.

2.3.2. Эпидемиологическая обстановка по ИКБ.

2.4. Серологический скрининг животных на зараженность клещевыми инфекциями.

2.4.1. Исследование сыворотки крови животных методом РНИФ на ИКБ.

2.4.2. Совершенствование методов диагностики клещевых инфекций у собак — иммунодиагностика ИКБ методом ИФА.

2.4.2.1. Разработка и апробация тест-системы.

2.4.2.2. Исследование сыворотки крови животных разработанной тест-системой на ИКБ.

2.4.3. Диагностика других кровепаразитов, передаваемых посредством иксодовых клещей.

2.5. Клинический аспект ИКБ.

2.6. Клинико-диагностические характеристики крови при иксодовом клещевом боррелиозе собак.

Введение Диссертация по биологии, на тему «Клещевой боррелиоз собак в условиях Вологодской области»

Иксодовый клещевой боррелиоз (ИКБ) — Лайм-боррелиоз (ЛБ), боррелиоз Лайма (БЛ), болезнь Лайма (БЛ) — представляет собой группу этиологически близких нозологических форм и занимает по уровню заболеваемости, тяжести и продолжительности клинического течения, затруднений в диагностике, а также широкого распространения одно из ведущих мест среди природно-очаговых инфекций в России и за рубежом.

Возбудителями ЛБ являются боррелии (спирохеты) рода Borrelia. Переносчиками служат паразитические иксодовые клещи рода Ixodes [16]. Заражение людей и домашних животных происходит при попадании боррелий при укусе зараженного клеща.

Впервые они были описаны в Европе, в том числе и в России, еще в конце XIX века [215, 136, 34]. В начале XX века шведский врач-дерматолог Арвид Афзелиус установил взаимосвязь между появлением на коже кольцевидной мигрирующей эритемы («эритема Афзелиуса») и присасыванием клеща [72]. В 1975 году в США, в штате Коннектикут, городке Лайм впервые были описаны случаи клещевого боррелиоза у группы детей с клиническими симптомами ювенального ревматоидного артрита [206, 205]. В 1982 году американский микробиолог Вилли Бургдорфер впервые выделил и идентифицировал неизвестные ранее спирохетоподобные микроорганизмы из клещей Ixodes dammini [99]. С 1991 года болезнь Лайма была включена в официальный государственный перечень заболеваний, регистрируемых на территории Российской Федерации [34].

Тот факт, что болезнь Лайма стала широко известна и получила самостоятельный статус лишь сравнительно недавно — с середины 70-х годов, во многом обусловлен экологическими изменениями, вызванными антропогенными воздействиями, приведшими к расширению распространения и росту численности клещей-переносчиков и к возникновению новых очагов. Было показано, что в США и странах

Западной Европы отказ от интенсивной агрокультуры, сокращение пахотных земель, развитие озеленения, увеличение пригородного строительства привели к мозаичному распространению лесов — созданию идеальных условий для существования клещей и их прокормителей [16]. Если ранее очаги ЛБ (как и очаги других природно-очаговых инфекций с теми же видами переносчиков) были приурочены, в основном, к лесным массивам в сельской местности, то теперь создалась реальная угроза городскому населению. Зараженные клещи по парковым коридорам стали проникать из пригородных лесов в городские парки и скверы. В США известны случаи заболевания горожан вследствие укуса одного клеща на газоне собственного дома [15].

Аналогичная ситуация сложилась и в нашей стране. Значительная часть случаев заражения людей происходит в пригородной зоне, на садово-огородных участках и в городских рекреационных зонах [15].

В связи с выявлением очагов ЛБ и зараженных клещей в непосредственной близости от жилищ человека особую актуальность приобретает вопрос об участии домашних животных, особенно собак, в циркуляции спирохет.

ЛБ собак интенсивно изучается в США, все большее внимание уделяется этой проблеме в странах Европы. Случаи ЛБ у собак или наличие у них антител против боррелий (что свидетельствует о факте заражения) регулярно отмечаются в США, Канаде, почти во всех странах Европы, в Японии. Там разработана и успешно применяется вакцина против ЛБ для собак. В России имеются все условия для циркуляции возбудителя ЛБ у собак, но заниматься этой проблемой стали лишь недавно, а диагностика и профилактика боррелиоза животных не узаконена и не принята ветеринарной практикой [15].

В весенне-осенний период собаки регулярно, гораздо чаще, чем люди, подвергаются нападениям клещей. Вероятность контактов с клещами, соответственно, и покусов, у собак очень велика вследствие таких факторов, как размеры (соответствуют ярусу концентрации на растительности активных взрослых клещей и нимф), наличие шерстного покрова, подвижность, обеспечивающая возможность контактов с клещами на больших территориях. Аттрактивность для клещей смыва шерсти собак выше, чем выделений потовых желез человека [59]. Восприимчивость к спирохетам у собак очень высока. Спирохеты или их ДНК регулярно обнаруживают в тканях собак, зараженных как в природе, так и в лаборатории [79, 207]. Экспериментально доказана способность собак сохранять возбудителей ЛБ и служить источником заражения для питающихся на них клещах [79, 85, 103, 174]. Спирохеты выделены из клещей, питавшихся на собаках в природных условиях.

В лабораторных условиях почти у 100% собак, на которых кормили инфицированных клещей, обнаружены специфические антитела к возбудителям ЛБ, сохраняющиеся на высоком уровне в течение длительного периода (до 505-581 дня, срок наблюдений) [79, 85]. Доля сероположительных среди собак, регулярно контактирующих с клещами в эндемичных районах, колеблется от 4—6 до 70-100% [116, 174]. Антитела отмечаются как у собак с клиническими проявлениями, так и у бессимптомных, но у последних несколько реже, к тому же титры антител у них обычно ниже. Так, например, в США в штатах Коннектикут и Нью-Йорк антитела выявлены у 92,9% собак с симптомами ЛБ и у 89,6% собак без клинических проявлений. Процент серопозитивных собак обычно значительно увеличивается от весны к осени [15].

Таким образом, четко выраженная способность воспринимать, сохранять возбудителей ЛБ и служить источником заражения для клещей определяет существенное значение собак, как резервуара спирохет, что особенно важно ввиду близости собак к человеку. Собаки участвуют в прокормлении клещей и в заносе их на садовые участки, лужайки вблизи домов, в городские парки, чем способствуют возникновению новых очагов и существенно увеличивают риск заражения людей. С увеличением урбанизации среды роль собак как резервуара спирохет все более возрастает [118]. Зараженная собака не только практически весь период до окончательного выздоровления служит резервуаром инфекции, но и может передавать возбудителя потомству трансплацентарно и даже с молоком [15].

Занесенные собаками не присосавшиеся клещи могут перейти на человека. Известны такие факты и для котов, вернувшихся домой и взятых на руки хозяевами. Считается, что без наличия переносчика зараженная собака не является источником инфекции для человека. Большинство авторов отрицает возможность контактного внеклещевого заражения- [127], однако имеются единичные данные о> заражении в экспериментах контрольных собак (и других лабораторных животных), содержавшихся вместе с инфицированными, предположительно через мочу [103]. ДНК спирохет в моче при помощи полимеразной цепной реакции довольно часто (14,8%) отмечаются у больных собак [85]. Однако патологический эффект существования антигена возбудителя ЛБ в моче не известен, равно как природа его и механизм распространения. Описаны случаи ЛБ человека в результате попадания возбудителя на конъюнктиву глаза, что вполне вероятно при раздавливании снимаемых с собак клещей [15].

Отмечается четкая корреляция серопозитивности собак с заболеваемостью человека, поэтому выявление уровня серопозитивности собак признано чувствительным, удобным и доступным методом оценки потенциальной эпидопасности территории и индикатором риска заболевания людей [165]. Так, например, было выявлено, что на различных территориях США при 1,5% серопозитивности собак риск заражения людей невелик, при 7-8% — достигает среднего уровня, а при 51% и выше — очень высок [116]. Дополнительным достоинством этого метода является возможность использования проб крови, которые регулярно берутся в ветеринарных лечебницах при других исследованиях.

Показана возможность использования больных собак в качестве лабораторной модели ввиду неоднократно отмечаемого сходства в развитии антительного ответа и в клинических признаках ЛБ у собак и людей [15].

Таким образом, широкое изучение проблемы ЛБ у собак в России крайне важно не только с позиций ветеринарии, но и для успешной профилактики ЛБ человека.

Цель и задачи исследования. Целью проводимых исследований явилось изучение экологии и биологии иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области, проведение серологического скрининга животных на зараженность клещевыми инфекциями и усовершенствование методов диагностики клещевого боррелиоза у собак.

Для достижения цели поставлены следующие задачи:

— установить наличие антител к боррелиям, передающимися иксодовыми клещами у собак и крупного рогатого скота;

— изучить особенности клинического проявления ИКБ у собак;

— выяснить видовой состав иксодовых клещей, степень их сезонной активности и спонтанной инфицированное™ боррелиями и их видовой состав в условиях Вологодской области;

— изучить эпидемиологическую ситуацию по ИКБ на территории Вологодской области;

— совершенствовать методы диагностики ИКБ у собак.

Научная новизна. Впервые в Вологодской области изучена эпизоотическая ситуация и степень распространения иксодовых клещевых боррелиозов у собак. г I

Изучены клинико-гематологические показатели при ИКБ собак. Установлены маркеры данного заболевания. Впервые разработана математическая модель управления «двойным» маркером.

В условиях Вологодской области проведены исследования по определению видового состава иксодовых — клещей, с учетом их численности и сезонной активности. Определена спонтанная инфицированность иксодовых клещей возбудителями ИКБ. Определен видовой состав боррелий.

Впервые разработана тест-система для диагностики ИКБ у собак методом ИФА.

Теоретическая и практическая значимость. Материалы диссертации вносят существенный вклад в решение актуальной проблемы борьбы с природно-очаговыми заболеваниями, а в особенности с болезнями общими для человека и животных.

Материалы диссертации использованы при подготовке:

Основные положения, выносимые на защиту.

— Инфицированность возбудителями иксодовых клещевых боррелиозов собак и крупного рогатого скота на территории Вологодской области.

— Особенности клинического течения ИКБ у собак.

— Видовой состав иксодовых клещей в природных и урбанизированных территориях в условиях Вологодской области.

— Численность и активность иксодовых клещей.

— Спонтанная инфицированность иксодовых клещей и видовой состав спирохет p. Borrelia.

Совершенствование методов диагностики путем разработки иммуноферментной тест-системы для выявления суммарных антител к возбудителям иксодовых клещевых боррелиозов у собак.

— научной международной конференции «Современные проблемы — общей, медицинской и ветеринарной паразитологии», Витебск, 2020;

— международном Московском конгрессе по болезням мелких домашних животных, Москва, 2020, 2020;

— научной международной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ,

ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», Санкт-Петербург, 2020, 2020;

Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, одна из которых опубликована в журнале, рекомендованном ВАК Минобразования и науки РФ для публикации материалов докторских и кандидатских диссертаций («Ветеринария» № 11, 2020).

Заключение Диссертация по теме «Паразитология», Молотова, Надежда Владимировна

3. Результаты работы включены отделом ветеринарии Департамента сельского хозяйства области в программу лекционного курса повышения квалификации врачей-эпизоотологов районных станций по борьбе с болезнями животных, Вологодским институтом переподготовки и повышения квалификации кадров агропромышленного комплекса (ФГОУ ВИППКК АПК) в план лекционного курса повышения квалификации ветеринарных врачей по программе «Технология сельскохозяйственного производства (ветеринария)», а также результаты исследований внедрены в учебный процесс в ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины» и ФГОУ ВПО «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина».

4. Нами разработана и внедрена в практику ветеринарных специалистов (через сеть ветеринарных клиник гг. Вологды и Череповца) «Памятка для владельцев собак» с целью профилактики ИКБ у собак.

4.1. Правила поведения в очагах ИКБ:

• Владельцы могут следить за территорией вокруг своих домов, регулярно обрабатывая ее инсектицидами и борясь с грызунами-вредителями.

• В местах, где встречаются клещи, идите посередине тропы, не сворачивайте с нее, собаку ведите рядом, не спуская с поводка.

• В лесу, а также после выхода из него, сразу же осмотрите животное. Будьте очень внимательны, потому что размеры клеща очень малы. Осмотры проводятся через каждые 2-3 часа, лучше всего — на хорошо освещенной солнцем сухой поляне. При выходе из леса проводите тщательный осмотр. При осмотре особое внимание обратите на складки кожи, ушные раковины, подмышечные и паховые области.

4.2. Акарициды и репелленты:

Собак можно защищать репеллентами от клещей и ежедневным грумингом. Для защиты животных от нападения клещей в мире выпускается большое количество акарицидных препаратов. По отзывам собаководов наиболее надежными на сегодняшний день являются такие средства против клещей как ошейник Kiltix (фирма Bayer) и спрей Frontline (фирма Merial, пр-ва Франции). Обратите внимание на то, чтобы ошейник был водостойким. Можно также обработать собаку спреем против клещей. При этом следует избегать попадания этих веществ на слизистую оболочку глаз, носа, рта у животного.

Дополнительно, в качестве «растительной добавки» к ошейнику против клещей Вы можете ежедневно добавлять в корм собаке дольку чеснока. Запах кожи собаки станет для клещей непривлекательным. Одинаковое действие окажут лавандовое, розмариновое или кедровое масло. Перед каждой прогулкой нанесите на шерсть собаки шприцем состав, подготовленный из расчета один пузырек масла на пол-литра воды. 4.3. Способы извлечения клеща: Внимание! Ни в коем случае:

• не пользуйтесь пинцетом при извлечении клеща;

• не капайте маслом на присосавшихся к собаке клещей;

• не смазывайте с помощью кисти лаком для ногтей; Так как:

1. Хоботок клеща вытягивается и еще глубже проникает в кожу животного, поэтому удалить его становиться сложнее.

2. При сдавливании, а также задыхаясь, клещ выделяет слюну, что увеличивает риск заражения.

Для сшггия с животного присосавшегося клеща необходимо обратиться в ветеринарную клинику или произвести это в домашних условиях, но обязательно в перчатках. Клеща необходимо как можно скорее удалить, стараясь не оторвать погруженный в кожу хоботок. Своевременное удаление присосавшихся клещей уменьшает вероятность передачи бактерий p. Borrelia собаке;

Прочную нитку как можно ближе к хоботку клеща завязывают в узел, и, растянув концы нитки в стороны, клеща извлекают, подтягивая его вверх; резкие движения при этом недопустимы;

Можно использовать специальные приспособления для удаления клещей, такие как «Ручка-Лассо» фирмы «Омникс», «Тиктвистер» (выкручиватель клещей).

1. не сдавливают тело клеща;

2. извлекают клеща целиком;

3. извлекают быстро, легко и без боли;

4. не требуется дополнительных приспособлений.

Инструкция по применению устройства «РУЧКА-ЛАССО»:

1, Раскройте петлю нажатием на зеленую кнопку и накиньте её на клеща как можно ближе к кожному покрову (см.рис. 1). Для удаления клеща малого размера прижмите наконечник как можно ближе к клещу (см. рис. 4) и легким нажатием на зеленую кнопку накиньте на него петлю.

2. Отпустите кнопку и расположите устройство перпендикулярно поверхности (см. рис. 2).

3. Прижмите зеленый наконечник к коже и поверните устройство вокруг своей оси один раз (см. рис. 3).

4, Удалите клеща перемещением устройства вертикально вверх (от кожи), продезинфицируйте место укуса.

ТИКТВИСТЕР (вы кру ч и вател ь клещей)

Uniclean Tick Twister — специальное приспособление, разработанное для удаления паразитных клещей из кожи животных и людей.

Удаление клещей с Uniclean Tick TWisten 1) Выбрать крючок, соответствую щии размеру клеща.

2) Взять крючок, приблизиться к клещу с плоской стороны тела. Подцепить клеща в прорезь крючка до тех пор, пока клещ не будет поддерживаться крючком.

3) Слегка приподнять крючок и повернуть его на 2-3 оборота (эффект вворачивания или отвинчивания).

В комплект входит: 2 крючка Uniciean Tick Twister: один большой и один маленький (для больших и маленьких клещей).

В случае отрыва головки клеща (случайно или во время его удаления), которая обычно остается в коже и имеет вид черной точки, место присасывания протирают влажной, смоченной спиртом ватой или бинтом, и головку удаляют, как занозу, стерильной иглой (предварительно прокаленной на огне). После снятия клеща ранку на теле животного тщательно дезинфицируют.

Клещей, извлеченных с животного, необходимо поместить во флакон или пробирку с пробкой и доставить в отделение диагностики вирусных инфекций базовой микробиологической лаборатории центра Госсанэпиднадзора в Вологодской области.

На территории области проведен анализ распространения возбудителей болезней передающихся иксодовыми клещами у собак. Впервые в Вологодской области у собак выявлен иксодовый клещевой боррелиоз с экстенсивностью инфекции 14,42 ± 3.44% и методом ПЦР установлена циркуляция двух геновидов возбудителей ИКБ: B.garinii, B.afselii. В связи с тем, что заболеваемость собак является индикатором возможности заболевания людей ИКБ, территорию Вологодской области можно считать, как регион со средним уровнем риска заражения людей.

С целью выявления участия крупного рогатого скота в циркуляции возбудителей боррелиозов, как животных находящихся длительно в природных условиях, были проведены исследования методом РНИФ на предмет инфицированности их возбудителем ИКБ. Установлена инфицированность крупного рогатого скота возбудителями ИКБ, которая составила в апреле и ноябре соответственно 13,88 ± 4,07% и 27,77 ± 5,27% от числа обследованных. Полученные результаты показали, что животные к концу пастбищного периода имеют максимальную экстенсинфицированность, титры антител против боррелий сохраняются до весны. Полученные результаты позволяют рассматривать крупный рогатый скот, как один из дополнительных резервуаров ИКБ в природных очагах.

Необходимо отметить, что в России диагностика ИКБ у домашних животных не принята ветеринарной практикой, хотя достаточно давно уже известно в мире, что животные являются опосредованно источниками возбудителей ИКБ для человека и животных.

При изучении эпидемиологической ситуации у людей по ИКБ выяснили, что за 2020-2020 гг. иксодовый клещевой боррелиоз (ИКБ) составил от 61,2 до 83,8% в структуре природно-очаговых инфекций регистрируемых на территории Вологодской области. Показатель заболеваемости людей ИКБ с 1998 года по 2020 гг. варьировал и составлял соответственно 19,4-28,82%, что в последнем случае выше среднероссийского в 5,7 раза.

Приведенные данные показали, что ЛБ представляет собой одну из актуальных проблем современной инфекционной патологии и паразитологии в Вологодской области.

При изучении видового состава иксодовых клещей установили, что на территории области встречаются следующие виды:

— I. persulcatus (таежный клещ) — он имеет первостепенное эпидемиологическое и эпизоотологическое значение, активен с апреля по август;

— I. ricinus (европейский лесной клещ) — активен с апреля по сентябрь, встречается реже, и как переносчик менее значим, чем первый; Наши исследования показали, что на исследуемых территориях I.ricinus встречается, намного реже, чем I. persulcatus.

— I. apronophorus — вид клеща нападающий на грызунов, но преимущественно на водяную полевку. При ИКБ не имеет значения.

— Dermacenter pictus — встречается в лесах, особенно расположенных около водоемов; прокормителями являются грызуны и насекомоядные, домашние и дикие животные; активен в мае и осенью, эпизоотологического значения по иксодовому клещевому боррелиозу не имеет. Он является переносчиком бабезиоза.

Выяснили, что иксодиды проявляют наибольшую активность в мае — июне (р 0,23 реакция считается положительной и ИФА Диссертация по биологии, кандидата ветеринарных наук, Молотова, Надежда Владимировна, Вологда

1. Акимов И. А., Небогаткин И. В. Видовой состав иксодовых клещей (Acarina, 1.odidae) Украины //Вестн. зоологии. — 2020. — 37, № 3. — С. 75-77.

2. Акимов И.А., Небогаткин И.В. Обнаружение Borrelia burgdorferi на территории г. Киева и его окрестностях// Вестник зоологии, 2020. Т. 35, №. 3., с. 14-18.

3. Ананьева Л.П. Лайм-боррелиоз или иксодовые клещевые боррлеиоза. Часть 1. Этиология, клиника, диагностика. Инфекции и антимикробная терапия, 2020, том 4, N 2, с.42-45.

4. Ананьева Л.П. Лаймская болезнь // В кн. Руководство по внутренним болезням. Ревматические болезни. М.: Медицина, 1997. -С. 344-352.

5. Антыкова Л.П., Вершинский Б.В., Пызина Л.В. Мониторинг очагов клещевого энцефалита и клещевого боррелиоза Лайм// В сб. «Экологический мониторинг паразитов». Санкт-Петербург, 1997.-С. 18-19.

6. Ашаткин А.Ф., Васильев А.В., Санин А.В. Гемобартонеллез // Справочник. М., 1998. — 255 с.

7. Балашов Ю.С. Иксодовые клещи — паразиты и переносчики инфекций. Л.: Наука, 1998. — 287 с.

8. Балашов Ю.С. Кровососущие клещи (Ixodoidea) — переносчики болезней человека и животных— Л., Наука, 1967 — 320 с.

9. Балашов Ю.С., Амосова Л.И., Григорьева Л.А. Трасвориальная и трансфазовая передача боррелий таёжным клещам Ixodes persulcatus (Ixodidae)// Паразитология, 1998, том 32, № 6, С. 112-121.

10. Балашов Ю.С., Григорьева Л.А., Оливер Дж.Х. 1967. Локализация боррелий в организме клеща Ixodes persulcatus на разных стадиях развития // Паразитология. Т. 31, вып. 2. С. 97-103.

11. Белименко В. В. Бабезиоз собак в Оренбургской и Московской областях : диссертация . канд. биол. наук. — М., 2020. — 141 с.

12. Бобкова О. О. Фауна ектопаразит1в кажашв Подшля // Вестн. зоологии. — 2020. — 36, № 2. — С. 77-81.

13. Буракова О.В. и др. 2020. Обнаружение спирохет Borrelia burgdorferi у мух-кровососок Lipoptena cervi L. (Diptera). РЭТ-инфо, № 3 стр.14-19.

14. Васильев И. К., Фурман И. М., Шелапутина И. А., Зипкина Т. С., Богаутдинова Т. В., Федорченко О. А., Санин А. В. Бабезиоз собак — новый подход к лечению // Ветеринарная клиника, 2020, май, с. 6 — 9.

15. Васильева И.С. Ришина Н. А. Заболевание собак Лайм-боррелиозом и их роль в поддержании природных очагов инфекций// РЭТ-инфо, 2020, №3, с. 10-14.

16. Васильева И.С., Наумов Р.Л. Паразитарная система болезни Лайма, состояние вопроса. Сообщение 1. Возбудители и переносчики // Acarina. 1996.Vol.4. № 1-2. Р.53-75.

17. Гаскелл Р.Н., Беннет М. Инфекционная анемия кошек (Гемобартонеллез) // Справочник по инфекционным болезням собак и кошек. М., 2020. 224 с.

18. Горелова Н. Б., Ковалевский Ю.В., Коренберг Э.И., Постик Д. 2020. Зараженность клеща Ixodes trianguliceps различными геновидами боррелий в приуралье.// VIII Акарол. Совещ. СПб., с.21-22.

19. Григорьева Л. А. Морфофизиологические изменения в организме питающихся клещей иксодин (IXODINAE), взаимодействие клещей с организмом хозяина и патогенами. Автореф. дис. доктора биол. наук. СПб. 2020. 39с.

20. Давыдова Н.С., Харитоненков И.Г., Бурлаков В.А. 2020 Серологическая диагностика Болезни Лайма у собак.// Материалы «Седьмого международного конгресса по проблемам ветеринарной медицины мелких домашних животных». Москва, 3-5 марта. С. 292-294.

21. Доспехов Б.А. Планирование полевого опыта и статистическая обработка данных. М.: Колос, 1972. — 215 с.

22. Дубинина Е. В., Алексеев А. Н. Динамика биоразнообразия возбудителей болезней переносимых клещами рода Ixodes: анализ многолетних данных// Мед. паразитол., 2020, № 2, с. 13—19.

23. Дьяконов JI. П. Роль неспецифических хозяев в поддержании пироплазмидозных очагов. // Бюлл. Всес. инст. экспер. ветерин. 1974. № 18. С. 15-18.

24. Информационный сборник статистических и аналитических материалов. Часть 2. Инфекционная заболеваемость в Российской Федерации в 2020-2020 гг. М.: ФЦ ГСЭН, 2020. — С. 167.

25. Коренберг Э. И. Ковалевский Ю. В., Кузнецова Р. И. и др. 1988. Выявление и первые результаты изучения болезни Лайма на Северо-западе СССР//Мед. паразитол. №1 С. 111-113.

26. Коренберг Э. И. Природная очаговость болезней: Исследования института Гамалея РАМН. М.: Русаки, 2020. — С. 99-121.

27. ЗГКоренберг Э. И. Эрлихиозы — новая для России проблема инфекционной патологии// Мед. паразитол., 2020, № 4., с. 10-16.

28. Коренберг Э.И. // Медицинская паразитология. 1996. — № 3. — С. 14-18.

29. Коренберг Э.И. Взаимоотношения возбудителей трансмиссивных болезней в микстинфицированных иксодовых клещах (Ixodidae) // Паразитология. 2020. Т. 33, вып. 4. С. 273-289.

30. Коренберг Э.И. Иксодовые клещевые боррелиозы: основные итоги изучения и профилактики в России // Материалы научно-практической конференции «Клещевые боррелиозы». — Ижевск, 2020. — С. 165-172.

31. Коренберг ЭИ. Иксодовые клещевые боррелиозы как группа заболеваний человека и главные итоги ее изучения в России// Журнал инфекционной патологии, 1996.- Т.З.-4.- с.22-24.

32. Коротков Ю.С., Никитин А .Я., Антонова A.M., и др. Временная структура численности таежного клеща в пригородной зоне Иркутска // Бюлл. восточно- сибирского НЦ СО РАМН. 2020. Т.55, № 3. С. 126-130.

33. Крылов М. В. Определитель паразитических простейших. // Санкт-Петербург: Наука, 1996.

34. Крылов М. В. Пироплазмиды. // Ленинград: Наука, 1981. С. 62-63, 146-148.

35. Лебедева В. Л. Пироплазмоз собак. // Докл. 5 Всес. съезда протозоологов. / Витебск, 1992. № 4. С. 85.

36. Лобзин Ю.В., Рахманова А.Г., Усков А.Н. Эпидемиология, этиология, клиника, диагностика, лечение и профилактика иксодовых клещевых боррелиозов // Методические рекомендации для врачей. СПб, 2020.- 63 с.

37. Лобзин Ю.В., Усков А.Н., Козлов С.С. Лайм-Боррелиоз (иксодовые клещевые боррелиозы).- СПб.: Фолиант, 2020.-155с.

38. Лукин Е. П., Грабарев П. А. Экологические аспекты патогенных для человека эрлихий и бартонелл// Мед. паразитол., 2020., №4, с. 17-22.

39. Манзенюк И.Н., Манзенюк О.Ю. Клещевые боррелиозы (болезнь Лайма). -Кольцово, 2020. 85 с.

40. МУ. 3.1.1027-01. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих — переносчиков возбудителей природно-очаговых инфекции. МЗ РФ. М., 2020

41. Наумов Р.Д., Гутова В.П. Привлечение таежных клещей запахом шерсти хозяина в природе // Мед. паразитол. 1992. № 5-6. С. 50-53.

42. Никитина Р. Е. Спирохеты птиц в клещах-переносчиках и механизм их передачи // Узб. биол. журн. 1968. № 5. С. 51—54.

43. Новикова Т.В., Молотова Н.В., Рыбакова Н.А., Филоненко И.В., Чубарова Т.В., Щустрова М.В. Экология иксодовых клещей и эпизоотология передаваемых ими заболеваний //Журнал Ветеринария-2020.-№ 11.-С.32-34.

44. Павловский Е.Н., Скрынник А.Н. 1945. О продолжительности сохранения самкой клеща Ornithodorus papillipes способности передавать клещевой возвратный тиф // Зоол. журн. Т. 24, №З.С. 161-16

45. Померанцев Б.И, Иксодовые клещи (Ixodinae). Фауна СССР. Паукообразные, IV(2), Москва-Ленинград, 1950. 223 с.

46. Пустовит Н. С. Иксодовые клещевые боррелиозы (болезнь Лайма) у собак / Дис. . канд. биол. наук. М. 2020. 154с.

47. Пустовит Н.С. 2020. Сезонная динамика и клинические проявления болезни Лайма у собак Московской области.// Материалы «Девятого Московского международного ветеринарного конгресса». Москва, 12-14 апреля. С.239-240.

48. Пустовит Н.С. Иксодовые клещевые боррелиозы (болезнь Лайма) у собак / Автореф. дис. канд. биол. наук. М. 2020. 25с.

49. Санин, А.В. Бабезиоз собак новое решение старой проблемы / А.В. Санин, И.К. Васильев // Зооиндустрия. — 2020. — № 7. — С. 19.

50. Сердюкова Г.В. Иксодовые клещи фауны СССР. М.: изд — во АН СССР, 1956.-121с.

51. Уркхарт Г.М., Дж. Эрмур, Дж. Дункан Ветеринарная паразитология //М.: Аквариум ЛТД, 2020.- 352с.

52. Филиппова Н. А. 1990. Таксономические аспекты переноса возбудителей болезни Лайма.// Паразитология. 24(4):257-267.

53. Филиппова Н. А. Иксодовые клещи подсем. Amblyomminae. Санкт-Петербург: Наука. 1997. 436 с. (в серии «Виды фауны СССР и сопредельных стран»).

54. Филиппова Н.А. Иксодовые клещи подсем. Ixodinae. Фауна СССР. Паукообразные, том IV(4). Ленинград «Наука», 1977. 395 с.

55. Филоненко И.В. Экологические аспекты функционирования природных очагов болезней на территории Вологодской области / Автореф. дис.канд. биол. наук. Ярославль, 2020. 20с.

56. Хейсин Е. М. Некоторые данные о строении Piroplasma bigemina и Piroplasma canis // Паразитология. 1968. Т. 2., № 1. С. 77-82.

57. Шубина А.В. Животные в городе: взаимодействие природного и социального. Материалы научно-практической конференции «Животные в городе». М, 2020., с. 133 138.

58. Aberer E., Kersten A., Klade H., Poitschek C., Jurecka W. 1996. Heterogeneity of Borrelia burgdorferi in the skin // Am. J. Dermathopathol. Vol. 18, No. 6. P. 571-579.

59. Adam Т., Gossmann G.S., Rasiah C. et al. // Infect. Immunol. 1991. -Vol. 59.-P. 2579-2585.

60. Afzelius A. // Arch. Dermatol. Syph. 1910. — Vol. 101. — S. 403-404.

61. Akov S: Blood digestion in ticks. Oxford: Pergamon Press; 1982.

62. Alban P.S., Johnson P.W., Nelson D.R. 2020. Serum-starvationinduced changes in protein synthesis and morphology of Borrelia burgdorferi II Microbiol. Vol. 146. Pt. l.P. 119-127.

63. Alban P.S., Nelson D.R. 2020. Serum-starvation-induced cyst formation in Borrelia burgdorferi under defined conditions // Intern. Conf. on Lyme disease in Munich, Germany. June 20-24, 2020. Abst. book. P. 37.

64. Alekseev A. N., Dubinina H.V. Bloodsucking arthropods: the danger for travellers and hazard vector traveling. Wiad Parazytol., 2020 vol.47, no. 1., p.33-37.

65. Anderson J.F., Johnson R.C., Magnarelli L.A. et al. // Infect. Immunol. 1986.-Vol. 51.-P. 394-396.

66. Angelov L.L., Arnaudov D.A. et.al. 1996. Epidemiology of Dermacentor marginatus-borne Lyme borreliosis.// VII Int. Congr. Lyme Borreliosis. San. Francisco. California. Abstracts. P.110.

67. Appel M.J., Allan S., Jacobson R.H. et al. Experimental Lyme disease in dogs produces arthritis and persistent infection // J. Infect. Dis. 1993. Vol.167. №3. P.651-654.

68. Azuma Y., Kawamura K. et al. 1993. Neurologic abnormalities in two dogs suspected Lyme disease.// Microbiol. Immunol., 37(4), 325-329.

69. Baird AG, Gillies JCM, Bone FJ, Dale BAS, Miscampbell NT. Prevalence of antibody indicating Lyme disease in farmers in Wigtownshire. Brit Med J 1989;299: 836-37.

70. Balmelli Т., Piffaretti J.C. // Res. Microbiol. 1995. — Vol. 146. — P. 329-340.

71. Baranton G., Marti Ras N., Postic D. // Ann. Med. Interne (Paris). -1998. Vol. 149. — P. 455^158.

72. Barbour A.G., Fish D. //Science.- 1993. -Vol. 260. -P. 1610-1616.

73. Bauerfeind R., Kreis U., Weiss R. et al. Detection of Borrelia burgdorferi in urine specimens from dogs by a nested polymerase chain reaction // Zent.bl. Bakteriol. 1998. Vol. 287. №4. P.347-361.

74. Bellet-Edimo R., Gem L. Betschan B. Frequency and efficiency of transovarial transmission of Boirelia burg-dorferi in Ixodes ricinus / VII Intern, congr. Lyme borreliosis. San Francisco, 1996. P. 39.

75. Bennett C.E. //Adv. Parasitol. 1995. -Vol. 36.-P. 343-405.

76. Berglund J., Eitrem R., Ornstein K. et al. // N. Engl. J. Med. 1995. -Vol. 333.-P. 1319-1327.

77. Blowey R. W., Carter S. D., White A. G. & Barnes A. (1994) Borrelia burgdorferi infections in UK cattle: a possible association with digital dermatitis. Veterinary Record 135, 577-578.

78. Bosler E., Cohen D. et al.1990. Host responses to Borrelia burgdorferi in dogs and horses.// Ann NY Acad Sci:221234.

79. Bosler EM, Schulze TL. The prevalence and significance of Borrelia burgdorferi in the urine of feral reservoir animals. Zbl Bakt Mikrob Hyg AJ 1986;263:40-4.

80. Boujan C.E., Scharer V., Bestetti G.E. Haemobartonellen Nachwesin Katzenblutausstrich // Schweiz Arch. Tierherld. 1991. H. 133. № 3. p. 153-156.

81. Breitschwerdt, E. В., Hegarty. В. C. Hancock. S. I. Sequential evaluation of dogs naturally infected with Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis,

82. Ehrlichia equi, Ehrlichia ewingii or Bartonella vinsonii. Journal of Clinical Microbiology 1998; 36: 2645—2651.

83. Brorson 0., Brorson S.H. 1997. Transformation of cystic forms of Borrelia burgdorferi to normal, mobile spirochetes// Infection. Vol. 25. P. 240246.

84. Brunet I.R., Spielman A., Telford III S.R. // Am. J. Trop. Med. Hyg. -1995. Vol. 53. — P. 300-302.

85. Burgdorfer W. Analyse des Infectionsverlaufer bei Omithodorus moubata und der naturlichen Ubertragung von Spirochaeta duttoni. // Acta Tropica, 1951, vol. 8, N 3.- P. 193—262.

86. Burgdorfer W., Anderson J.E., et.al. 1991. Relationship of borrelia burgdorferi to its arthropod vectors.// Scand.J.Infect.Dis.Suppl. 77:35-40.

87. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F. et al. Lyme disease a tick-borne spirochetosis? // Science. — 1982. — Vol. 216. — P. 1317-1319.

88. Burgess E, Gillette D, Pickett JP. Arthritis and panuveitis as manifestations of Borrelia burgdorferi infection in a Wisconsin pony. J Am Vet Med Assoc 1986; 189: 1340-42.

89. Burgess E. C. (1988) Borrelia burgdorferi infection in Wisconsin horses and cows. Annals of the New York Academy of Sciences 539,235-243

90. Burgess E. C., Gendron-Fitzpatrick A. & Wright W. O. (1987) Arthritis and systemic disease caused by Borrelia burgdorferi infection in a cow. Journal of the American Veterinary Medical Association 191,1468-1470

91. Burgess E.C. Experimental inoculation of dogs with Borrelia burgdorferi.// Zbl. Bakteriol., Mikrobiol. und Hyg. 1986. Vol. A263. P.49-54.

92. Burgess EC, Schneider E. Testing for Borrelia burgdorferi. J Am Vet Med Assoc 1989;195:844-46.

93. Burgess EC. Natural exposure of Wisconsin dogs to the Lyme disease spirochete (Borrelia burgdorferi). Lab Anim Sci 1986;36:288-90.

94. Bushmich SL, Post JE. Lyme disease update for veterinarians. Cooperative Extension Publication #89-31, Spring 1989; The University of Connecticut, Storrs, Ct.

95. Callister S., Jobe D. et al. 1996. Sensitivity and specificity of the borreliacidal-antibody test during early Lyme disease: a «gold standard»// Clin. Diagn. Lab. Immun. 3:399-402.

96. Centers for Disease Control and Prevention . Recomendations for test performance and interpretation from the Second National Conference on Serologic Diagnosis of Lyme disease.// MMWR Morb. Mortal.Wkly Rep, 1995.-v.44.-p. 590-591.

97. Chang Y., Appel M., Jacobson R., Shin S., et al. 1995. Recombinant OspA Protects Dogs against infection and disease caused by Borrelia burgdorferi.//J. Infect.Immun. 63(9):3543-3549.

98. Chang Y.-F., Novosel V., Chang C.-F., Kim J.B., Shin S.L., Lein D.H. Detection human granulocytic ehrlichiosis agent and Borrelia burgdorferi in ticks by polymerase chain reaction. J. Vet. Diagn. Invest., 1998, vol.10, p.56- 59.

99. Clark A. M. Hopkins, G. F, Maclean, 1. A. Tick borne fever in dogs. Veterinary Record 1996:137:268.

100. Correa W. M. Babesiose canina: transmissao transplacentaria. // Biologico. Brasil., 1974, v. 11, p. 321-322.

101. Daniel M., Cerny, V. Occurrence the tick Ixodes ricinus (L.) under the conditions antropopressure. Folia parasitoligica, 1990, vol. 37, no.2, p. 183-186.

102. Daniels Т., Fish D. et al. 1993. Canine exposure to Borrelia burgdorferi and prevalence of Ixodes damini on deer as a measure of Lyme disease risk in Northeastern United States.// J. Med. Entomol. 30:171-178.

103. Daniels T.J., Falco R.C., Schwartz I., Varde S., Robbins R.G. Deer tick (Ixodes scapularis) and the agents Lyme disease and human granulocytic ehrlichiosis in a New York City park. Emerging Infectious Diseases, 1997, vol.3, p. 353-355.

104. Daniels T.J., Fish D., Levine J.F. et al. Canine exposure to Borrelia burgdorferi and prevalence of Ixodes dammini risk in the northeastern United States. //J. Med. Entomol. 1993. Vol.30. № 1. P. 171-178.

105. Egenvall A., Lilliehook. L. Bjoersdorff. A., et al. Detection of granulocytic Ehrlichia species DNA by PCR in persistently infected dogs. Veterinary Record 2020); 146: 186-190.

106. Eng Т., M.Wilson, et al.1988. Greater risk of Borrelia burgdorferi infection in dogs than in people.// J. Inf. Dis. 158:1410-1411.

107. Fahrimal Y., G f W.L., Jasmer D.P. Detection Babesia bovis carrier cattle by using polymerase chain reaction amplification parasite DNA. J. Clin. Microbiol., 1992, vol. 30, p. 2091-2096.

108. Falco R., H.D. Smith et al. 1993. The distribution of canine exposure to Borrelia burgdorferi in a Lyme disease endemic area. // Am. J. Publ. Health. 83:1305-1310.

109. Frank J.C. Taking a hard look at Borrelia burgdorferi. J Am Vet Med Assoc 1989-194:1521.

110. Garcia-Monco J.C., Benach J.I. 1997. Mechanism of injury in Lyme neuroborreliosis.// Sem. Neurol. 17:57-62.

111. Gern L et al. (1998). European reservoir hosts of Borrelia burgdorferi sensu lato. Zentralblatt fiXr Bakteriologie: International Journal of Medical Microbiology, 287:196-204.

112. Girschick H.J., Huppertz H.I. et al. 1996. Intracellular persistence of Borrelia burgdorferi in human synovial cells.// Reumatol. Int. 16:125-132.

113. Golightly M.G, Thomas JA, Viciana AL. The laboratory diagnosis of Lyme Borreliosis. Lab Med 1990;21:299-304.

114. Golightly M.G. Lyme borreliosis: Laboratory considerations // Seminars in Neurology. -1997.-v. 17.-N1 .-p. 11 -17.

115. Goossens H.A., van den Bogard A.E., Nohlmans M.K. Dogs as sentinels for human Lyme borreliosis in the Netherlands. // J.Clin. Microbiol. 2020. Vol.39. №3. P.844-848. и др.

116. Grauer G., Burgess A. et al. 1988. Renal lesions associated with Lyme borreliosis in a dog. J. Am. Vet. Med. Assoc. 193:237-239.

117. Gray J.S., Kahl O., Janetzki-Mittman C., Stein J., Guy E. Acquisition Borrelia burgdorferi by Ixodes ricinus ticks fed on the European hedgehog, Erinaceus europaeus L. Exp. Appl. Acarol, 1994, vol 18, p. 485-491.

118. Greene R. 1990. An update on the serodiagnosis of canine Lyme Borreliosis.// J Vet Intern Med 4:167-171.

119. Guy E.C., Robertson J.N., Cimmino M. et al. // Zentral. Bacteriol. — 1998. Vol. 287. — P. 241-247.

120. Halouzka J., Postic D., Hubalek Z. // Med. Vet. Entomol. 1998. — Vol. 12.-P. 103-105.

121. Harrus, S.3 Kass, P. H., Klement, E., Waner, T. Canine monocytic ehrlichiosis: A retrospective study of 100 cases, and an epidemiological investigation of prognostic factors for the disease. Veterinary Record 1997; 141: 360-363.

122. Harrus. S. Waner, T. Bark. H. et al. Recent advances in determining the pathogenesis of canine monocytic ehrlichiosis. Journal of Clinical Microbiology 2020; 37: 2745—2749.

123. Herxheimer K., Hartmann K. // Arch. Dermatol. (Berlin). 1902. -Vol. 61. -S. 57-76.

124. Higgins J.A., Azad A.F. Use polymerase chain reaction to detect bacteria in arthropods: A review. J. Med. Entomol. 1995, vol. 32, p. 213-222.

125. Hindle E, 1912. On the life-cycle of Spirochaeta gallinarum II Parasitology. Vol. 4. P. 463-477.

126. Horak (ed.) Tick Vector Biology: Medical and Veterinary Aspects, Springer Verlag, Berlin, 1992. 335 p.

127. Hovius K.E. Borrelia infections in dogs. Epidemiological, clinical and diagnostic aspects. 2020. 148p.

128. Ни C.M., Humair P.-F., Wallich R., Gern L. Apodemus sp. rodents, reservoirs hosts for Borrelia afzelii in an endemic area in Switzerland. Zentralbl. Bact. 1997, vol. 285,p. 558-564.

129. Humair P.F., Postic D., Wallich R., Gern L. // Zentralbl. Bakteriol. -1998. T. 4. — № 287. — P. 521-538. 46.

130. Huppertz H.I., Bohme M., Standaerth S.M. et al. // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2020. — Vol. 18. — P. 697-703.

131. Irwin, P. J., Hutchinson. G. W. Clinical and pathological findings of Babesia infection in dogs. Australian Veterinary Journal 1991: 68: 204-209.

132. Isogai H., Isogai E., Masuzawa T, Yanagihara Y., Matsubara M., Shimanuki M., Seta Т., Fukai K., Kurosawa N., Enokidani M. & Others (1992) Seroepidemiological survey for antibody to Borrelia burgdorferi in cows. Microbiology & Immunology 36,1029-1039.

133. Jacobsen, L. S. Clark. 1. A. The pathophysiology of canine babesiosis: New approaches to an old puzzle. Journal of the South African Veterinary Association 1994; 65.

134. Jacobson R., Chang Y. et al. 1996. Lyme disease: laboratory diagnosis of infected and vaccinated symptomatic dogs.// Seminars Vet Med Surg. 11:172182.

135. Johansson. К. E. Pettersson. M. Uhlen. M. et al. Identification of the causative agent of granulocytic ehrlichiosis in Swedish dogs and horses by direct solid phase sequencing of PCR products. Research in Veterinary Science 1995; 58: 109-112.

136. Johnson R., Schmid G.P. et al. 1984. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiological agent of Lyme disease.// Int. J. Sys. Bacteriol. 34:496-497.

137. Jolivet G., Marchand A. Le piroplasme du chien aspects taxonomigue, morfologique et biologique. // Anim. Co., 1974, v. 2, p. 13, 125-126.

138. Kasbohrer A. & Schonberg A. (1990) Serological studies of the occurrence ofBorrelia burgdorferi in domestic animals in Berlin (West). Berliner undMunchener Tierarztliche Wochenschrift 103, 374-378

139. Kawabata H., Myouga F., Inagaki Y. et al. // Microb. Pathog. 1998. -Vol. 24.-P. 155-166.

140. Kontos. V. I., Papadopoulos, O., French, T. W. Natural and experimental canine infections with a Greek strain of Ehrlichia platvs. Veterinary Clinical Pathology 1991; 20:101-105.

141. Lane R.S, Foley JE, Eisen L, Lennette ET, Peot MA. 2020. Acarologic risk of exposure to emerging tick-borne bacterial pathogens in a semirural community in northern California.// Vector Borne Zoonotic Dis 2020 Fall;l(3):197-210.

142. Lane R.S., Burgdorfer W. 1988. Spirochetes in mammals and ticks from a focus of Lyme borreliosis in California.// J. Wildl. Dis. 24:1-9.

143. Ledue N.B., Collins M.F., Craig W.Y. // J. Clin. Microbiol. 1996. -Vol. 34.-P. 2343-2350.

144. Levin L.M., Des Vignes F, Fish D. Disparity in the natural cycles Borrelia burgdorferi and the agent human granulocytic ehrlichiosis. Emerg Infect Dis. 2020, vol.5, p. 204-208.

145. Liang F.T., Jacobson R.H., Straubinger R.K. et al. 2020. Characterization of a Borrelia burgdorferi VlsE Invariable Region useful in canine1.me disease serodiagnosis by enzyme-link Immunosorbent assay.// J Clin Microbiol. 4160-4166.Vol38.No.l 1.

146. Liang, F. Т., Aberer E. et al. 2020. Antigenic conservation of an immunodominant invariable region of the VlsE lipoprotein among European Pathogenic genospecies of Borrelia burgdorferi SL.// J. Infect. Dis. 182:14551462.

147. Liang, F. Т., Alvarez A. L. et al. 2020. An immunodominant conserved region within the variable domain of VlsE, the variable surface antigen of Borrelia burgdorferi.!’/J. Immunol. 163:5566-5573.

148. Liebisch G., Bautsch W., Sohns B. Typing Borrelia burgdorferi sensu lato in ticks attached to human skin. J. Clin. Microbiol., 2020, vol.37, p. 33953408.

149. Liebisch G., Sohns В., Bautsch W. Detection and typing Borrelia burgdorferi sensu lato in Ixodes ricinus ticks attached to human skin by PCR. J. Clin. Microbiol., 1998, vol. 36, p. 3355-3358.

150. Lindenmayer J.M., Marshall D., Onderdonk A.B. Dogs as sentinels for Lyme disease in Massachusets // Am. J. Publ. Health. 1991. Vol.81. №11. P.1448-1455.И др.

151. Lischer C. J., Leutenegger С. M., Braun U. , Lutz H. Diagnosis of Lyme disease in two cows by the detection of Borrelia burgdorferi DMA The Veterinary Record, April 22, 2020, 146,497-499

152. Loebermann M., Fingerle V., Lademann M, Fritzsche C., Reisinger E.C. Borrelia burgdorferi and Anaplasma phagocytophilum coinfection. Emerg Infect Dis., 2020, vol. 12, no. 2, p. 353-355.

153. MacDonald A.B. 1988. Concurrent neocortical borreliosis and Alzheimer’s disease: Demonstration of a spirochetal cyst form // Ann. N.Y. Acad. Sci. Vol. 539. P. 468-470.

154. Magnarelli I.A., Denicola A., Stafford K.C. III., Anderson J.F. Borrelia burgdorferi in an urban environment: white-tailed deer with infected ticks and antibodies. J. Clin. Microbiol., 1995, vol. 33, p.541- 544.

155. Magnarelli L, Anderson J, Schreier A, Riclce C. Clinical and serologic studies of canine borreliosis. J Am Vet Med Assoc 1987; 191:1089-94.

156. Magnarelli L.A, Anderson JF, Schreier AB. Persistence of antibodies to Borrelia burgdorferi in dogs of New York and Connecticut. J Am Vet Med Assoc 1990;196:1064-1068.

157. Magnarelli L.A. // Am. J. Med. 1995. — Vol. 98. — P. 10-20.

158. Magnarelli L.A., Anderson J.F., Fish D. 1988. Ticks and bitting insects infected with etiologic agent of Lyme disease Borrelia burgdorferi./’/ J. Clin. Microbiol. 26(8):1482-1486.

159. Magnarelli L.A., Flavell R.A.JPadula S.J. et al. Serologic diagnosis of canine and equine borreliosis: use of recombinant antigens in enzyme-link immunosorbent assays // J. Clin. Microbiol. 1997. Vol.35. №1. P. 169-173. и др.

160. Magnarelli LA. Serologic testing for Lyme disease. Postgraduate Medicine 1990; 87:149-56.

161. Masuzawa Т., Takada N., Kudeken M. et al. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol.-2020.-Vol. 51 (Pt. 5).-P. 1817-1824.

162. Mather T.N., Telfold S.R.III. et.al. 1990. Borrelia burgdorferi and Babesia microti: efficiency of transmission from reservoirs to vector ticks.// Exp. Parasitol. 70(1):55-61.

163. Matton P. & Van Melckebeke H. (1990) Bovine borreliosis: comparison of simple methods for detection of the spirochaete in the blood. Tropical Animal Health 6- Production 22,147-152.

164. Matushka F.R., Endepols S., Richter D., Ohlenbusch A., Eiffert A., Spielman A. Risk urban Lyme disease enhanced by the presence rats. J. Infect. Dis., 1996, vol. 174, p. 1108-1111.

165. McCrossin I. // Med. J. Aust. 1986.-Vol. 144.-P. 724-725.

166. Mhalu F.S., Matre R. // East Afrc. Med. J. 1996. — Vol. 73. — P. 583585.

167. Murphy G.L., Ewing S.A., Whitworth L.C., Fox J.C., Kocan A.A. A molecular and serological survey Ehrlichia canis, E. chafeensis, and E. ewingii in dogs and ticks from Oklahoma. Vet. Parasitol., 1998, vol. 79, p. 325-339.

168. Nadelman R.B.,Wormser G.P. Lyme borreliosis // Lancet. 1998. -Vol. 352.-P. 557-565.185.0schmann P., Kraiczy P. et al. Lyme Borreliosis and Tick-Borne Encephalitis / Eds. Bremen, 2020, Germany. —144 p.

169. Pcken R.N., Strle F., Ruzic-Sabljik E. et al. // J. Invest. Dermatol. -1997.-Vol. 108.-P. 92-97.

170. Pechere J.-C., first edition Intercellular bacterial infections / Eds. first edition. 1996.- 187 p. 25.

171. Persing D.H., Telford III S.R., Rys P.N. et al. // Science. 1990. — Vol. 249.-P. 1420-1423.

172. Pichon В., Godfroid E., Hoyois В., Rodhain F., Perez-eid C. Simultaneous infection Ixodes ricinus nymphs by two Borrelia burgdorferi sensu lato species: possible implications for clinical manifestations. Emerg. Infect. Dis., 1995, vol. l,p. 89-90.

173. Piesman J. 1989. Transmission of Lyme disease spirochetes.// Esp.Appl. Acarol. 7(l):71-80.

174. Piesman J. 1991. Experimental acquisition of the Lyme disease spirochete Borrelia burgdorferi by larvae I.dammini during partial blood meal.// J.Med.Entomol. 28(2):259-262.

175. Piesman J. 1992. Vector competence of ticks for the Lyme disease spirochete.// Int. Conf. Tick-Borne Pathogens at the Host-Vector Interface: An

176. Agenda for Research. Proc. And Abstracts.// Saint Paul. Minnesota. USA. 130134.

177. Post J.E, Shaw E, Palka F. Lyme disease in horses. Proceedings of the American Association of Equine Practitioners 1987;32:415-85.

178. Post J.E, Shaw EE, Wright SD. Suspected borreliosis in cattle. Ann NY Acad Sci 1988;539:488.

179. Randolph, S.E., Craine, N.G. (1995) General framework for comparative quantitative studies on transmission of tick-borne diseases using Lyme borreliosis Europe as an example. Journal of Medical Entomology 2, 765777.

180. Rauter C., Hartung Th. Prevalence Borrelia burgdorferi sencu lato Genospecies in Ixodes ricinus Ticks in Europe: a Metaanalysis. Applied and Enviromental Microbiology, 2020, p. 7203-7216

181. Regendanz P., Reichenov E. Die Entwicklung von Babesia canis in Dermacentor reticulatus. // Arch. Protistenk. 1933, v. 1. P. 50-71.

182. Rothwell J. T, Christie В. M., Williams C. & Walker К. H. (1989) Suspected Lyme disease in a cow. Australian Veterinary Journal 66, 296-298

183. Russell R.C. // Emerg. Infect. Dis. 1995. — Vol. 1. — P. 29-31.

184. Sarih M., Jouda F., Gern L., Postic D. // Vector Borne Zoonotic Dis. -2020.-Vol. 3.-P. 133-139.

185. Schafrank S.N., Kurban A.IC., Martone G. // Arch. Dermatol. 1990.-Vol. 126.-P. 685-686.

186. Schmid G.P. // Rev. Infect. Dis. 1985. — Vol. 7. — P.41-50.

187. Shin S.J., Chang Y.F. et al.1993. Cross-reactiviti between B.burgdorferi and other spirochetes affects specificity of serotests for detection of antibodies to the Lyme disease agent in dogs.// Vet Microbiol. 36(1-2): 161-74.

188. Sonenshine DE, Ceraul SM, Hynes WL, Macaluso KR, Azad AF: Expression of defensin-like peptides in tick hemolymph and midgut in response to challenge with Borrelia burgdorferi, Escherischia coli and Bacillus subtilis. Exp ApplAcarol 2020, 28:127-134.

189. Steere A.C., Broderick T.F., Malawista S.E. // Am. J. Epidemiol. -1978.-Vol. 108.-P. 312-321.

190. Steere A.C., Malawista S.E., Snydman D.R. et al. // Arthritis Rheumatism. 1977. — Vol. 20. — P. 7-17.

191. Straubinger R.K. PCR-based quantification of Borrelia burgdorferi in canine tissues over a 500-day postinfection period // J.Clin.Microbiol. Vol.38. № 6. P.2191-2199. и др.

192. Strle F., Picken R.N., Cheng Y. et al. // Clin. Infect. Dis. 1997. — Vol. 25. -P. 273-280.

193. Taboada, J., Harvey. J. W. Levy, M. G. et al. Seroprevalence ofbabesiosis in izrcyhounds in Florida. Journal of the American Veterinary Medical Association 1992: 200: 47-50.

194. Tugwell P., Dennis D.T., Weinstein A. et al. // Ann. Intern. Med. -1997.-Vol. 127.-P. 1109-1123.

195. Van Dam A.P. // Exp. Rev. Mol. Diagn. -2020. Vol. 1. — P. 413-427.

196. Van Dam A.P., Kuiper H., Vos K. et al. // Clin. Infect. Dis. 1993. -Vol. 17.-P. 708-717.

197. Wang G., van Dam A.P., Dankert J. Phenotypic and genetic characterization a novel Borrelia burgdorferi sensu lato isolate from a patient with Lyme borreliosis. J. Clin. Microbiol., 2020, vol. 37, no. 9, p. 3025-3028.

198. Wang G., van Dam A.P., Schwartz I., Dankert J. // Clin. Microbiol. Rev. 2020.-Vol. 12.-P. 633-653.

199. Weber K. and Pfister H.-W. History of Lyme borreliosis in Europe /К. Weber and W. Burgdorrfer (ed.). Aspects of Lyme borreliosis. Springer-Verlag KG, Berlin, Germany. 1993. — P. 1-20.

200. Wells S. J., Trent A. M., Robinson R. A., Knutson K. S. & Bey R. E (1993) Association between clinical lameness and Borrelia burgdorferi antibody in dairy cows. American Journal of Veterinary Research 54, 398-405

201. Welzl. C., Leisewitz. A., Jacobson. L. Vaughn-Scott. T. Systemic inflammatory response syndrome and secondary multiple organ dysfunctionsyndrome in canine babesiosis. Journal of Veterinary Internal Medicine 2020; 14: 244.

202. Wilske B. // Intern. J. Med. Microbiol. 2020. — Vol. 291. — Suppl. № 33.-P. 314-319.

203. Wilske B. // Vector Borne Zoonotic Dis. 2020. — Vol. 3. — P. 215227.

204. Wlosniewski, A. Leriche. M. A. Chavigny. C. et al. Study on asymptomatic Babesia cam’s infections in an enzootic area. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases 1997; 20: 75-86.

205. Wolf V., Wecke J. 1994. Formation of multiple treponemes // Zbl. Bakt. Bd. 280. S. 297-303.

206. Zhang, J. R., Hardham J. M. et al. 1997. Antigenic variation in Lyme disease borrelia by promiscuous recombination of VMP-like sequence cassettes.// Cell 89:275-285.

1, Раскройте петлю нажатием на зеленую кнопку и накиньте её на клеща как можно ближе к кожному покрову (см.рис. 1). Для удаления клеща малого размера прижмите наконечник как можно ближе к клещу (см. рис. 4) и легким нажатием на зеленую кнопку накиньте на него петлю.